Curso Teorico-Practico de Toma de Muestra micologicas

Publicacion: 27/4/2015

El hospital de la Plaza de la Salud  en su departamento de Laboratorio Clínico, organizó este pasado miércoles 29 de Abril del 2015, el cuarto curso teórico- práctico de Micología sobre actualización en la toma de muestras micológicas, dictada por la Lic./ micóloga Noris Salcedo, encargada del la Unidad de micología. El objetivo principal fue: Dar a conocer las técnicas  de laboratorio más usadas para la toma de muestras de las infecciones micóticas.

La Lic. Salcedo explico de manera detallada a las Bioanalistas participantes la importancia de una buena toma de muestra como pilar principal para un buen diagnostico Micológico,

También expuso las diferentes formas y cuidados al tomar una muestra de piel y sus anexos, con ejemplos en forma virtual de las diferentes lesiones que se presentan en nuestro medio,  con atención especial al respeto y privacidad del paciente, así como evitar los eventos adversos y  el manejo adecuado de los recursos para garantizar la perdurabilidad de la empresa.

Los temas incluidos en este curso fueron: Tinea del cuerpo, Onicomicosis, Tinea nigra, Queratololisis Punacta,  Eritrasma, Pitiriasis versicolor  y sus asociaciones con Malassezias, Demodex, Sarnas, Candidiasis. Tinea capitis, Sporotricosis, Criptococosis y Blastomicosis.

En la parte práctica la expositora presentó los elementos a tomar en cuenta para la selección de una correcta toma de muestra, utilizando voluntarios que acudieron para dicha actividad.

                   

 

 

FELICIDADES A TODAS LAS BIOANALISTAS DOMINICANAS EN SU DIA (9-5).

Reporte de dos casos de Prototheca Zopfii en Mastitis Bovina

Publicada: Rev.Atajo, p.28, vol 5, No 1, 2005.


1-Lic. Noris Salcedo 

2-Dr.Jose Jimenez

1-Laboratorio Veterinario Central, División de Diagnóstico. Ave. Monumental Los Girasoles, Santo Domingo República Dominicana.ncsalcedo@gmail.com
2-Dirección General de Ganadería, Secretaria de Estado de Agricultura, Santo Domingo, Republica Dominicana.

Palabras claves: vacas  Prototheca zopfii, mastitis.

Resumen

Se reportan dos casos de mastitis bovina en leches en Unidad de Micología del Laboratorio Veterinario Central (LAVECEN)  en 1998, periodo en el cual hemos recibido leches procedentes de diversas áreas del país con mas de un 34 % de positividad en mastitis producida por hongos, hasta la fecha  no habíamos identificado ningún caso de  Prototheca spp. Se identifica a P. zopfii en los dos casos y se realiza pruebas de sensibilidad.

INTRODUCCION

 Protothecosis es una infección causada por un alga del género Prototheca, la cual no produce clorofila. Ha sido descrito en muchos animales, principalmente produciendo  mastitis  bovina. Prototheca spp. ha sido aislado originalmente de la baba de los árboles posteriormente de una variedad de fuentes ambientales, incluyendo las plantas, suelo, fango, arroyos, aguas estancadas, aguas marinas, agua potable de los ganados, heces de los bovinos y del cerdo, en perros, salmón, y animales salvajes como venados, ratones, y conejos, en el lodo y  piso del granero (1,2,3), generalmente en granjas lecheras donde está mojado y contaminado el ambiente con el abono fecal, provocando una ruta ascendente de infección. También se ha encontrado el colonizando  la piel humana, uñas, zona respiratoria, y sistema digestivo (4, 5,7). En los Estados Unidos la  Protothecosis es una infección rara, con solo 100 casos reportados en humanos desde el primero  en 1964 (10). La mayoría de los casos de infecciones en humanos han sido de Prototheca wickerhamii y menos comunes de Prototheca zopfii (11). Las  especies P. wickerhamii, P. zopfii han sido conocidas como agentes infecciosos en humanos y animales (12), aun existen otras tres especies mas: P. moriformis, P. stagnora, P.filamentosa, (16)

La infección se introduce generalmente vía la inoculación traumática. Prototheca  zopfii causa mastitis piogranulomatoso esporádica en el  ganado. El número en aumento de aislamientos de Prototheca spp. de los casos de mastitis bovina indican la necesidad de una evaluación de este problema, remitiendo al laboratorio las leches procedentes de vacas con mastitis clínica y subclínica, ( en periodos secos o de lactancia) o la materia fecal de vacas lecheras en rebaños sin historia de mastitis por Prototheca,  las cuales pueden ser encontradas en cultivos de un 20-70% (12). Las reses con o sin mastitis pueden arrojar Prototheca por sus materia fecal y asi contaminar las aguas y el suelo que a su vez penetran por los pezones produciendo la infección mamaria. (14).

Además de esto, estas algas pueden ser transmitidas de vaca a vaca durante el ordeño y como no responden al tratamiento con los antibióticos  aplicados con frecuencia, la cual es la primera opción del Veterinario o del granjero de la lechería, sin identificar el agente causante de la mastitis, la única alternativa es  la eliminación de los animales afectados, como el mejor método para controlar la enfermedad y medidas preventivas para  evitar la difusión del agente (14)

 

REPORTE DE DOS  CASOS

Desde la reapertura de la Unidad de Micología del Laboratorio Veterinario Central (LAVECEN)  en 1998, periodo en el cual hemos recibido leches procedentes de diversas áreas del país con mas de un 34 % de positividad en mastitis producida por hongos, hasta la fecha  no habíamos identificado ningún caso de  Prototheca spp.

PRIMER CASO

En el mes de Diciembre 2005, se reciben  muestras procedentes de una finca lechera de San Juan de la Maguana con un total de 320 vacas en periodos secos y de lactancia, de las cuales 40 estaban positivas a Mastitis clínica y subclínica identificadas con la prueba  de California (CTM).

MATERIALES  Y MÉTODOS

Se analizan   las leches de ganado bovino recibidas para identificación de gérmenes productores de mastitis. Se cultivan   en Sabouraud Dextrosa Agar en la  unidad de la micología, y en agar sangre al 5% en la unidad de la bacteriología, se  incubaron a 37 °C.

RESULTADOS Se obtienen  colonias blanco crema o blanco-gris en forma pastosa de 24 a 36 horas. Las colonias en agar sangre pueden se confundidas con  levaduras Staphylococcus coagulasa negativo.  Prototheca spp. crece bien en Agar Papa y agar sabouraud entre 25-37 °C. pero la ciclohexamida inhibe su crecimiento.

Se  identifica Prototheca zopfii de una muestra de aspecto  aguado y con ligero color verde azulado Se inocula en CHROMagar candida  resultando  colonias rosadas, pequeñas y secas. Se realiza tinción con azul de lactofenol y se observan al microscopio los esporangios característicos con una dimensión de (10-30µm) y conteniendo de 4-8 células hijas (en forma de morula). Se identificó además  por el  micro método cualitativo RapID Yeast Plus System (Innovative Diagnostic Systems, Norcross, Ga.) con un 99.9% de probabilidad.

 

LAS PRUEBAS DE SUSCEPTIBILIDAD

Se realizan a los antibioticos: Streptomicina, Nitrofurantoina, Norfloxacina, T.Sulfametoxazole. Ampicilina Lincomicina, Ciprofroxacina, Amoxicilina, Tretraciclina, Neomicina, y Gentamicina, siendo resistentes a todos ellos. (Fig. 1) . Los antimicóticos usados por nosotros en este trabajo fueron:  Fluconazol (R),  Ketoconazol (R), Clotrimazol ( R) de los laboratorios LAANED , Anfotericina B (S), Nistatina (S),  Neo-sensitabs de Rosco (Denamrk). (Fig. 2). Estos resultados son similares a los reportados en la literatura.

 

Se reportan los resultados al dueño.

La Finca es visitada por dos Médicos veterinarios los cuales  examinan las reses y observan secreciones anormales en todos los cuartos de algunos de los animales. Se recogen muestras  al azar de la leche de las que habían resultado positivas al examen California mastitis se reciben en los laboratorios del  LAVECEN y se encuentran negativas para el alga. Además se analiza el agua de los bebederos y material de alimentación en  los silos los cuales también fueron  negativos para el microorganismo, por lo que se desconoce la fuente de la infección, hasta obtener mayores resultados en estudios posteriores.  Se sugirió al granjero  parar el tratamiento, por ser esta alga resistente a todos  los antibióticos usados en nuestra unidad de Bacteriología, Fig. #1(a y b), y a la mayoría de los antimicóticos disponibles en la unidad de Micología (Fig. # 2), además se aconsejo ordeñar la vaca infectada al final, y su posterior separación y eliminación, mejorar el saneamiento, y no aplicar medicamentos a  vacas sin  antes saber cual es el agente etiológico de la infección.

 

a               b

Fig. # 1: Antibiogramas

     

Fig. # 2 antifungigrama                Fig. #3: antifungigrama

 

                        

Fig # 4 P zopffi en SDA (24 hrs.)            Fig. # 5 P. zopfii,en CHROMagar colonias suave, blanco-crema

           
Fig. 6 Preparación húmeda teñida con azul de lactofenol.

Esporangios conteniendo esporangiosporas (endospora) ,característica de Prototheca.

SEGUNDO CASO

En el mes de Febrero del 2006, se reciben muestras de leches  en un solo envase de 10 reses de una finca del Este del País (Macao-Higuey). De un total de 40 vacas, 23 estaban  en ordeño y solo 10 con manifestaciones clínicas de mastitis. Se   desconoce si en esta finca se realiza la prueba de campo para  mastitis.   Se cultivan las muestras en Sabourad Dextrosa agar con cloranfenicol, con la finalidad de buscar el agente etiológico que esta produciendo la infección. Se encuentra entre otros microorganismos la presencia de Prototheca spp. Se reporta al Médico Veterinario remitente y se le sugiere enviar las muestras por separado.

PREVENCIÓN DE PROTOTHECA

Se ha demostrado que Prototheca  puede  sobrevivir y pasar a través de los intestinos y del estomago simple de los animales sin multiplicarse. Después de injerir el organismo, la vaca lo pasa al abono y contamina su propio lecho, así como el de sus compañeros de la manada. En tiempo caliente, o en sitios húmedos de la granja, los organismos de Protothecas sobreviven y se multiplican fuera de la vaca. Cuando los números son altos, hay mayor probabilidad del contacto de los pezones  y si las condiciones son adecuadas, la mastitis se inicia.(17)

Como media preventiva deben eliminarse las vacas infectadas  para reducir el riego de  propagar la infeccion a  otras de su rebaño, asi como al medio ambiente.

La preparación de ordeño debe ser primera tarea. Los pezones deben siempre ser limpios y secos antes de que se aplique la unidad de ordeño, para eliminar la contaminación por bacterias ambientales y Protothecas. Esta preparación implica  lavar y el secar con  toallas individuales de papel o  paño, y luego aplicar yodo a los pezones y secar de nuevo con una toalla individual del papel o paño antes de obtener la  leche.

EN RESUMEN:

Ubres limpias y secas
Asegurar un medio ambiente limpio y seco de las vacas en lactancia y periodo seco.
Cuidar los caminos y pasturas secos.
Mantener limpios los equipos de ordeño

CONCLUSION

La Protothecosis es una enfermedad rara,  de tratamiento muy difícil  y es a menudo de fatales consecuencias. Cuando se sospeche de mastitis por Prototheca, el cultivo para su confirmación es necesario, ya que esta alga es muchas veces confundida por su apariencia parecida a las levaduras, seguida de una cuidadosa identificación por un analista con experiencia.

Todo el medio ambiente debe ser desinfectado (bebederos, maquinas de ordeño envases etc.), buen drenaje de aguas y las reses infectadas elegidas y separadas para evitar el riego de trasmisión a otras vacas y así evitar el incremento del numero de microorganismos en el medio ambiente.

Debido a que hasta el presente no existe tratamiento, si este es posible debe ser aplicado por Médicos Veterinarios con licencia el cual  debería consultar la literatura actual para informarse de los últimos tratamientos.

LITERATURA

1-Arnold, P., and D.G. Ahearn. 1972. The systematics of the genus Prototheca with a description of a new species P. filamenta. Mycologia 64:265.

2- Anderson, K.L., and R.L. Walker. 1988. Sources of Prototheca spp in a dairy herd environment. J. Am. Vet. Med. Assoc. 193:553.

3- Pore, R.S., E.A. Barnett, W.C. Barnes, Jr., and J.D. Walker. 1983. Prototheca ecology. Mycopathologia 81:49.

4-Huerre, M., P. Ravisse, and H. Solomon. 1993. Human protothecosis and environment. Bull. Soc. Pathol. Exot. 86:484-488

5-Nelson, A. M., R. C. Neafie, and D. H. Connor. 1987. Cutaneous protothecosis and chlorellosis: extraordinary, «aquatic-borne» algal infections. Clin. Dermatol. 5:76-87

6-Pore, R. S., E. A. Barnett, W. C. Barnes, Jr., and J. D. Walker. 1983. Prototheca ecology. Mycopathologia 81:49-62

7-Wirth, F. A., J. A. Passalacqua, and G. Kao. 1999. Disseminated cutaneous protothecosis in an immunocompromised host: a case report and literature review. Cutis 63:185-188
8- Costa EO, Ribeiro AR, Melville PA, Prada MS, Carciofi AC, Watanabe ET.Bovine mastitis due to algae of the genus Prototheca. Mycopathologia. 1996;133(2):85-8.

9- M. A. Pfaller and D. J. Diekem  Unusual Fungal and Pseudofungal Infections of Humans of Clinical Microbiology, April 2005, p. 1495-1504, Vol. 43, No. 4
JCM.43.4.1495-1504.2005

10- Jon Meyerle, MD, Earl Glusac, MD, Protothecosis, Yale University School of Medicine July 14, 2005. www.thedoctorsdoctor.com/diseases/protothecosis

11-Thiele D. Bergmann A. Protothecosis in human medicine. International Journal of Hygiene and Environmental Health, Volume 204, Numbers 5-6, February 2002, pp. 297-302(6).

12-Wirth,FA.,Passalaccqua,J.&Kao.G. Dimesinated cutaneous Protothecosis in an inmunocompromised host, a case report and literature review.Cutis,63:185-188,1999.

13-De Vargas AC, Lazzari A, Santurio JM, Alves SH, Ferreira G, Kreutz LC
Isolation of Prothoteca zopfii from a case of bovine mastitis in Brazil. Mycopathologia. 1998; 142(3):135-7.14- Ruben N. Gonzalez.  Prototheca, Yeast, and Bacillus as a Cause of Mastitis.Cornell University Ithaca, New York

15- Mycology Proficiency testing Program. Wadsworth State Department of Heath. January 2002

16- M.Sam Sudaman and William Kaplan. Identification of  Prototheca species by immunofluorescence . American Society for Microbiology 1973, P. 961-990, vol. 25.No. 6.

17-Source: NMC Publication «Laboratory and Field Handbook on Bovine Mastitis» (1999) pg. 133.

 

 

Prototheca wickerhamii en paciente con Tuberculosis ganglionar. Relato de un caso

Publicada: Presentación Oral en la Jornada Científica UASD, Octubre 23-25, 2011.Anuario de Investigaciones científicas Vol. 1 No. 1, 2012

* Lic, Salcedo Inoa N. Septiembre 2009- Dic. 2010

**  MD, Cabrera Castillo S.   

Encargada de la Sección de Micología, Hospital General de la Plaza de la Salud (HGPS), Santo Domingo, República Dominicana.ncsalcedo@gmail.com

** Coordinadora del Departamento de Dermatología, Hospital General de la Plaza de la Salud (HGPS), Santo Domingo, República Dominicana

Resumen. Se presenta el caso de un masculino  de 24 años VIH negativo,  con tres nódulos  en el cuello, uno de los cuales drenaba pus. Se identifica Prototheca wickerhamii por examenes directos y cultivos en varias ocasiones. Ademas se confirma Tuberculosis  ganglionar  por baciloscopia (BK) y cultivos en Lowenstein Jensen (LJ). Se le aplica tratamiento para la tuberculosis,  de acuerdo a lo establecido en el programa control de la Tuberculosis (PNCT). Para  el microorganismo  oportunista (P. wickerhamii), se trato con 200 mg diarios de Itraconazol por dos meses.
Palabras claves: Prototheca wickerhamii, Tuberculosis Ganglionar

Abstract: A case of a 24 year old male HIV-negative, with three nodes in the neck, one of which drained pus. Prototheca wickerhamii was identified by direct examinations and cultures on several occasions. Tuberculosis is also confirmed by smear and lymph node cultures in Lowenstein Jensen.  Treatment for tuberculosis is applied, according to the Tuberculosis Control Programm (NTCP). For the opportunistic organism (P.wickerhamii), was treated with Itraconazol 200 mg daily for two months.

Keys words:  Prototheca wickerhamii, ganglionar tuberculosis

Introduccion

La Protothecosis es una infeccion ocasionada por algas aclóricas, del genero Prototheca,  las cuales llegan a se patógenas primarias u oportunistas1. Afectan a animales y al hombre, en general produciendo cuadros cutáneos, subcutáneos y en raras ocasiones diseminadas.Es un padecimiento exógeno, que se inica por la inoculación del microorganismo.

Esta alga ha  sido aislada de de gran variedad de fuentes ambientales, incluyendo plantas, suelos húmedos, fango, arroyos, arena, aguas potables, pisos de graneros etc. Son microorganismos cosmopolitas, aunque son más abundantes en áreas geográficas de clima templado. Mildred Feo aislo 5 cepas en un lapso de cuatro años, de un total de 320 muestra en raspado vulvar, tinea corporis, secreción de oido, pliegues de mano y onicopatia inespecifica (2)

Las especies más comunes en humanos y animales son  P. wickerhamii y P. Zopfii, aun existen otras tres especies mas: P. moriformis, P. stagnoraP. filamentosa.  Prototheca spp. ha sido reportado  en muchos animales, generalmente en granjas lecheras , produciendo mastitis bovina ( 1,2,3,4,5,6),. En Santo Domingo, República Dominicana, hemos encontrado dos casos de P. zopfii produciendo mastitis bovina,  siendo necesario el sacrificio de los animales infectados por  la poca  sensibilidad del microorganismo a los antifúngicos y la gran cantidad de medicamentos a ser usado lo cual es muy caro (6).

En el ser humano además de las infecciones cutáneas se han implicado en infecciones de heridas quirúrgicas, en gastroenteritis, tracto respiratorio, hígado, sangre, meninges etc. De acuerdo a diferentes autores de observa con más frecuencia en individuos inmunocompremetidos  por terapias con corticoides, AIDS, malnutrición, enfermedades renales o hepáticas, cáncer o desordenes autoinmune. La mayoría de las veces las lesiones son en aéreas expuestas por traumatismo, resultando nódulos, pápulas o una erupción eczematoidea,  observándose tres formas  clínicas: 1) Cutánea, 2) Subcutánea 3) La forma diseminada. En individuos sanos la infección es localizada y curable, pero los casos de enfermedad diseminada en individuos severamente inmunocompremetidos  puede ser fatal. (4,5)

En los últimos años esta infección ha incrementado su importancia en medicina Humana, siendo en Estados Unidos la Protothecosis una infección rara se observa mas en pacientes inmunocomprometidos y la incidencia mundial al 2009 era de 117 casos relatados con un  66%, 19% y  15%  asociados a infecciones cutaneas, sistemica  y  bursitis, respectivamente,  desde el primero hallazgo en África en 1964,( 8).La protothecosis afecta a individuos jovenes alrededro de 30 años o a temprana edad , por lo que se han reportado casos en pediatria.

El tratamiento puede ser variable, obteniéndose éxitos con  antibacterianos sistémicos y  antifúngicos como Anfotericina B, y azoles ( Itraconazole, Fluconazol y Ketoconazol), otros recomiendan extirpación quirúrgica de la lesión, terbinafina,  ketoconazol oral,  Anfotericina B intravenosa , con o sin  tetraciclina oral.(,6,7,10,11,12,13,14,15,1).

Presentación del Caso clinico:

Paciente de 24 años VIH negativo el cual  Inicia su infección en septiembre 2009, presentó con una historia de tres meses de tos seca, no productiva, fatiga pérdida de peso y fiebre con  una radiografia de tórax normal. Cinco  semanas después se siente un nódulo en el cuello, acude al médico, porque viene notando aumento de volumen del cuello, siendo valorado por diferentes facultativos, quienes lo estudiaron, incluyendo la biopsia por aspiración con aguja fina de la región cervical,  sin poder definir el diagnóstico, por lo cual es enviado a nuestro centro, el pus extraido para investigar Tuberculosis ganglionar.  Se aprecia  adenomegalia laterocervical derecha, y el último de los tres ganglios esta abierto y drenendo pus (Fig # 1). A la muestra de Pus extraida por aspiracion enviada por el Medico tratante, se le realiza  (BK) y cultivos en el medio solido   (LJ), los cuales resultan negativos. Aparece un  nódulo más por lo que se repite el 17 Febrero del 2010 otra BK y cultivos para TB,  resultando estos negativos. Se ingresa por dos días en hospital público para biopsia, la cual es suspendida sin razon aparente. El 12 de Abril se realiza otra BK, resultando negativo, y Cultivos en proceso.

El 15 de Mayo al Laboratorio recibe dos muestras de secreción purulenta: una  en frasco estéril y otra en transcul, para  BK y cultivos, se le realiza además KOH ver Fig. # 2), y azul de lactofenos, donde se observan células (esporangios con endosporas y vacuolas.En la coloracion de Grocott aparecen células no definidas, por lo que se considera no es un hongo. Se Sospecha de Prototheca spp.

El 20 de Mayo el paciente acude al laboratorio en   busca de  sus resultados y en espera de obtener un tratamiento para su enfermedad. Se le toma otra muestra de la secrecion del nódulo abierto, el paciente refiere tiene otro nódulo mas. Se le realiza coloración Azul lactofenol (ver fig. # 3), observándose las mismas células con esporangios y endosporas por lo que se realiza cultivo en Sabouraud Dextrosa agar con cloranfenicol. Se preparan extendidos con muestra de pus, observándoselas las  mismas células que en el examen en fresco. Se reporta BK negativa, y presencia de Prototheca spp. Se recomienda realizar biopsia para TB, la cual nunca es recibida.
El 25 de Mayo se observa Crecimiento de colonias en el medio de Sabouraud, parecidas a levaduras compatibles con Prototheca wickerhamii, (ver fig. # 4), lo que se confirma por método API 20 Aux de bioMérieux, France y la sensibilidad antifungica con el método ATB fungus 3, resultando sensible a: Anfotericina B,  Voriconazol y Itraconazol  y con actividad intermedia a la 5 Flurocitocina y  resitente al Fluconazol.

El 28 de Mayo se observa ligero crecimiento en los cultivos de LJ de colonias color amarillo pálido, procesados el 12 de Mayo, se realiza ZN y se observan abundantes bacilos de Kcoh, (Fig # 5). El 31 de Mayo el crecimiento en (LJ),  es enviado al Laboratorio Veterinario Central (LAVECEN), para realizar prueba de sensibilidad e identificación de Micobacteria, recibiendose el  reporte y final confirmacion de  Micobacteria tuberculosis sensible a: Isoniacida, Estreptomicina y Rifampicina, resistente a: Etambutol y Piracinamida.

Se trata el paciente para  su enfermedad de fondo, la tuberculosis,  administrándosele las drogas que en la actualidad   salud Pública ofrece gratuitamente a los pacientes dentro de su programa control de la Tuberculosis, Isoniacida 4 diarias por dos meses, luego 3 veces a la semana por 4 meses, la Rifampicina,  todos los días x dos meses y luego una interdiaria)  Para la Prototheca oportunista se trato con 200 mg diarios de Itraconazol por dos meses. El paciente viene a consulta con lesión aparentemente curada,  resolución visible de sus nódulos y  continua en tratamiento hasta cumplir con el programa (ver fig# 6).

Fig # 1. Nodulo fistulizado

fig # 2. KOH (esporangios, endosporas y vacuolas

Fig #3. Azul de Lactofenol (esporangios)

Fig # 4. Crecimiento en Sabouraud 5 dias

(Fg. # 5)  Bacilos de Koch con coloracion ZN

(Fg. # 6) paciente despues del tratamiento

Comentarios:
El presente reporte constituye el tercer caso  realizado en el laboratorio de Micologia del Hospital de la Plaza de la salud, siendo los dos primeros en unas de mano y pies 17,18, en donde se relaciona a la Prototheca wickerhamii con un aislamiento en humanos. Este caso es una asociacion con el bacilo de Koch en nodulo cervical, en un joven previamente sano.  Sin embargo la forma como el adquirió el microorganismo, no se conoce. Este caso tiene importancia clínica y epidemiológica, puesto que se logró demostrar la presencia del agente en Santo Domingo y que se tuvo la suficiente destreza técnica para aislarlo e identificarlo; además, se acumuló experiencia para futuros casos.

En cuanto a la  tuberculosis ganglionar la cual es la infeccion mas importante en este paciente, “es considera la patologia mas frecuente en nuestro medio en casos de adenopatias cervicales en adulto”, según estudio realizado en el Hospital Dr. Luis E. Aybar por Yudelka almonte y colaboradores  de 39 biopsias de adenopatias cervicales  10 casos (25. 6%), fueron por tuberculosis ganglionar 16

La  Prototheca  wickerhamii en este caso asociada a tuberculosis ganglionar la consideramos como oportunista, por tener el paciente una puerta de entrada en su region cervical.  Se le administro tratamiento para evitar la posible  diseminacion del alga por via linfatica.

Referencias

 

1-  Bonifaz A. (2000), Micologia Medica Básica, 2d. Edición, Méndez Editores Mexico, D.F.  p.420-422

2- Feo M. Cinco cepas de Prototheca de origen humano. Mycopathologia vol.46, No.1, 53-59. Disponible en www.springerlink.com/index/K4V6671225764J6T.pd1972

3- Matsuda T, Matsumoto T. Protothecosis: a report of two cases in Japan and a review of the literature. Eur J Epidemiol 1992; 8(3):397-406

4- Expedito K.A. Camboim; Patrícia B. Neves; Felício Garino JúniorI; Josemar M. Medeiros; Franklin Riet-Correa. Protothecosis an emergent disease.  Pesq. Vet. Bras. vol.30 no.1 Rio de Janeiro Jan.2010. Disponible en www.scielo.br/scielo.php?pid=S0100-736X2010000100015
5- M. A. Pfaller and D. J. Diekema: Unusual Fungal and Pseudofungal Infections of Humans, Journal of Clinical Microbiology, April 2005, p. 1495-1504, Vol. 43, No. 4

6-  Salcedo N.: Prototheca zopfii en Mastitis bovina, Reporte de dos casos. Santo Domingo D.N. República Dominicana Revista  Atajo 2006, vol. 5, No. 1

7- Thiele D. Bergmann A.: Protothecosis in human medicine, International Journal of Hygiene and Environmental Health, Volume 204, Numbers 5-6, February 2002, p. 297-302

8- L.G. Corbellini, D. Driemeier, C. Cruz, M.M. Dias and L. Ferreiro: Bovine Mastitis due to Prototheca zopfii: Clinical, Epidemiological and Pathological Aspects in a Brazilian Dairy Herd. Tropical Animal Health and Production, Volume 33, No. 6, December 2001, pp. 463-470

9- Jon H Meyerle, MD, Earl Glusac, MD, Protothecosi Cutaneous. Jon H Meyerle, MD, Earl Glusac, MD, Protothecosi Cutaneous. Sep 15, 2006. Department of Dermatology, Johns
Hopkins University School of Medicine; www.emedicine.com

10-Chao SC, Hsu MM, Lee JY: Cutaneous protothecosis: report of five cases Br J Dermatol. 2002 Apr; 146(4):688-93

11- Bianchi M.  Robles A. Vitale R.Helou S.  Arechavala A. Negroni R.: The usefulness of blood culture in diagnosing HIV-related systemic mycoses: evaluation of a manual lysis centrifugation method. Medical mycology    2000, vol. 38, no1, p. 77-80

12- Kim S.-T.Suk K.-S.Chae Y. S. Kim.: Successful treatment with fluconazole of protothecosis developing at the site of an intralesional corticosteroid injection. Clinical Orthopaedics and Related Research. Vol. 466, no 12, p. 3143-3146

13- C. Pérez Melón, M. Camba, A. Tinajas, A. Otero, A. Iglesias, E. Armada y J. Esteban: Peritonitis por Prototheca Wickerhamii en pacientes en diálisis peritoneal. Nefrologia, Volumen 27. Num. 1. 2007

14-Dr. Marco Luis Herrera, Dr. Alvaro Vargas y Dra. Marlen Campos: Primer aislamiento clínico de Prototheca wickerhamii en Costa Rica. Rev. méd. Hosp. Nac. Niños (Costa Rica) Vol.33 n.1-2 San José 1998

15- Salcedo N., Isa Isa, R., Arthur Nouel A.: Prevalencia de Cándida Dubliniensis en mucosa de pacientes VIH positivo y negativo en la Ciudad de Santo Domingo, República Dominicana. Septiembre 2004. Disponible en www.infocompu.com/adolfo_arthur/dubliniensis

16, Almonte, Y, y colaboradores. Resultados de 39 biopsisa en adenopatias cervicales, 1996, disponible en : bvsdo.intec.edu.do/revistas/amd/1997/19/…/AMD-1997-19-04-132-134.pdf

Deteccion de Micobacterium Tuberculosis por Observacion Microscopica y Susceptibilidad a las Drogas

DETECTION OF MYCOBACTERIA TUBERCULOSIS BY MICROSCOPIC OBSERVATION DRUGS SUSCEPTIBILITY METHOD FOR THE RAPID DIAGNOSIS OF TUBERCULOSIS

 Publicada:Rev. Académica Biomédica Digital, Venezuela. Enero-Marzo 2013

* Salcedo Inoa N,  **Ceballos V, ***, Guillén LE, ****Pimentel RD.

*Lic. En Bioanálisis, Post grado en ciencias y tecnología de alimentos, Profesora Investigadora de Unibe. Encargada de la Sección  Micología del Hospital General de la Plaza de la Salud. Responsable de correspondencia. ncsalcedo@gmail.com, n.salcedo@unibe.edu.do

**MD, MA de Neumología del Hospital Dr. Luis Eduardo Aybar.

***MD, Maestría en Administración en Salud Pública Western Michigan University, Profesor de Bioestadística y Epidemiología Clínica de la Universidad Iberoamericana. luiss_guillen@hotmail.com, luis.guillen.hernandez@gmail.com

**** MD, Post grado en Neumología pediátrica, PHD en Salud pública e investigación en, Jefe departamento de  Investigación y enseñanza del Hospital Luis E. Aybar. Docente de la Universidad Autónoma de santo Domingo y de la Universidad Pedro Henríquez Ureña dr.pimentelrd@gmail.com

Este trabajo ha sido financiado  por el “Financiamiento del Fondo de Investigación Competitiva de UNIBE 2011”,  Decanato de Investigación, además con el apoyo de infraestructura, equipos y materiales del laboratorio de Gastroenterología del Hospital Luis Eduardo Aybar, sección de Tuberculosis.

Este artículo ha sido leído y aprobado por todos los autores considerándolo como un trabajo honesto y reconocen que  no presenta conflictos de intereses ni económicos ni competitivos.

RESUMEN

En esta investigación se identifica a Mycobacterium tuberculosis y su sensibilidad a drogas por el método de susceptibilidad directa a fármacos mediante observación microscópica comparándose con los métodos tradicionales.

Métodos:

Se analizaron 100 muestras de esputo procedentes de dos grupos de pacientes: pacientes sintomáticos respiratorios y pacientes de alto riesgo con sospecha de tuberculosis. Se realizó baciloscopía, cultivo en medio Löwenstein-Jensen, método MODS, y susceptibilidad antimicrobiana por método de las proporciones.

Resultados:

De un total de 100 muestras procesadas,  22%  resultaron positivos a la baciloscopía. 22 casos fueron positivos a  Löwenstein-Jensen, y  23 casos positivos a MODS.  La sensibilidad utilizando MODS fue del 100% y para el  cultivo en Löwenstein-Jensen fue del 100%. La especificidad de MODS fue del 100% y LJ fue del 98.7%, (P < 0.05).

El tiempo promedio o average para obtener resultados positivos con MODS y LJ fue de 7 y 34.17 días respectivamente (P<0.05). De los 22 aislamientos determinados para hallar el patrón de resistencia, la concordancia entre MODS y el método de  las proporciones fue del 96% para INH y 100% para Rifampicina.  Para ambos métodos resultaron 5 MDR  y  un caso monoresistente a isoniazida(P < 0.05)

Conclusiones

El método MODS demuestra ser más rápido, más sensible y más costo-efectivo que los métodos de referencia utilizados para  detectar Mycobacterium tuberculosis.

 

Palabras claves: Tuberculosis, Método MODS, concordancia y  resistencia.

Abstract:

This research compares the microscopic observation of drug susceptibility test with traditional methods for identifying the Mycobacterium Tuberculosis as well as drug sensibility.

Methods:

This study analyzed 100 sputum samples from two patient groups: one group was categorized as having been exposed to tuberculosis and the other group was categorized as having a high risk of TB. This study performed Sputum-smears, Löwenstein-Jensen cultures, as well as the MODS method, and the proportion method.

Results:

Out of 100 samples studied, 22 cases were sputum-smear positive. 22 cases were found positive to Löwenstein-Jensen, and 23 positive cases were found to MODS. Both sensitivity and specificity for MODS were 100% (P < 0.05). Löwenstein-Jensen had a sensitivity of 100% and a specificity of 98.7% (P <0.05).

The average time for positive results using MODS was 7 days, while LJ took 34.17 days (P < 0.05).Of the 22 Sputum samples taken in order to determine the pattern of resistance, MODS and the proportion method matched in 96% for INH and 100% for Rifampin.  For both methods, there were 5 MDR and one case resistant to Isoniazide (P < 0.05).

Conclusions

The MODS liquid method proved to be faster, more sensitive, and more cost effective compared to the reference methods used to detect Mycobacterium Tuberculosis.

Keywords: Tuberculosis, MODS method, concordance and resistance.

INTRODUCCIÓN.

La tuberculosis (TB) es  una enfermedad respiratoria  que está cobrando cada vez más importancia después del (1) inicio de la epidemia por el virus de la inmunodeficiencia humana (VIH); causando esto una alta incidencia de la coinfección Tuberculosis TB/VIH.

Según la Organización Mundial de la Salud (OMS) (1) en 2010, un total de 8,8 millones de personas enfermaron de tuberculosis y 1,4 millones murieron por esta causa. Más del 95 por ciento de las muertes por tuberculosis ocurrieron en países de ingresos bajos y medianos, siendo  esta enfermedad una de las tres causas principales de muerte en las mujeres entre los 15 y los 44 años,  con un 13 por ciento de los casos presentándose como coinfección TB/VIH.  La OMS (2) reporta que la TB es la segunda causa mundial de mortalidad por agente infeccioso.

La OMS (2) está enfocada en reducir el aumento de la TB para el año 2015. Su estrategia para lograrlo se basa en  la  DOTS (Direct Observation of Therapy Short Course), terapia directamente observada de corta duración. El proyecto de la estrategia DOTS asegura el  entrenamiento a personal de salud para el adecuado diagnóstico y tratamiento apoyados en la microscopía de esputo, disponibilidad de fármacos para el tratamiento, apoyo de las instituciones gubernamentales y la administración supervisada de fármacos de primera línea. (3)

Los métodos diagnósticos que se utilizan en la actualidad tiene la desventaja que se tardan un promedio de 30 días para determinar la positividad de la prueba. Hoy en día se conoce el método MODS (microscopic-observation drug-susceptibility assay), el cual es un método que puede mejorar la efectividad del programa para la reducción de TB por su rapidez en la detección de Mycobacterim tuberculosis y su sensibilidad a los fármacos. (4-10)

En el presente estudio se basó en establecer el tiempo para detectar la Mycobacterim tuberculosis,  así como la sensibilidad, especificidad y valores predictivos de la prueba diagnóstica MODS y comparar los resultados de esta prueba con los índices de utilidad de las pruebas de detección rutinarias tales como Löwenstein-Jensen (LJ) y método de las proporciones (MP), con la finalidad de establecer diferencias significativas.

MATERIALES Y MÉTODO.

Se realizó un estudio cuantitativo prospectivo con  dos grupos de pacientes, se procesaron  100 muestras consecutivas de esputos procedentes de   pacientes sintomáticos respiratorios con sospecha clínica de TB y otro grupo de pacientes en alto riesgo de tener TB, que acudieron al departamento de neumología  del hospital Dr. Luis Eduardo Aybar en Santo Domingo. Después de la recolección, las muestras se transportan de inmediato al laboratorio para ser procesadas. Se tomó como criterio de presencia de la enfermedad un resultado positivo con el método LJ, el cual es considerado como el “Gold standard”.  El estudio fue revisado y aprobado por el Comité de Investigación (CIE) de la Universidad Iberoamericana (UNIBE) y del comité de ética del  centro de Gastroenterología del Hospital donde se realizó el estudio.

El estudio se llevo  a cabo en el laboratorio de TB del Centro de Gastroenterología,  perteneciente al programa Nacional de la TB, por estar el laboratorio de TB gubernamental (LANER) en remodelación de sus instalaciones. El centro está en la ciudad sanitaria Dr. Luis Eduardo Aybar,  localizado en el sector María Auxiliadora y delimitada al norte por la calle Osvaldo Bazil, al sur por la Federico Velázquez, al Este por el Albert Thomas y al Oeste por la Federico Bermúdez, el cual pertenece al área IV de la región metropolitana. Localizado en la  zona suroeste  del Distrito Nacional República dominicana.

La población del estudio comprende todos los pacientes que acudieron al servicio de neumología del hospital Dr. Luis Eduardo Aybar en Santo Domingo por presunta TB durante el período Enero- Junio del 2012. La muestra fue dividida en dos grupos.  El primer grupo estuvo compuesto por  pacientes de consulta externa, que acudan por una presunta tuberculosis al programa Nacional de control de la tuberculosis (PNCT). El segundo grupo lo formaron  pacientes que acudieron al mismo departamento,  por presunta TB  los cuales habían estado en contacto con un paciente con TB con uno o más síntomas (fiebre, pérdida de peso, sudoración nocturna, hemoptisis) o un factor de riesgo como es el contacto con un paciente tuberculoso, trabajador profesional de la salud o empleado en una cárcel, hospitalización durante el año anterior o excarcelado. Ambos fueron sometidos a los mismos métodos con el objetivo de realizar el cultivo con el método MODS y Löwenstein-Jensen. Los criterios  de exclusión para  los dos grupos estaban basados en tener edad menor de 18 años o incapacidad o falta de disposición para otorgar el consentimiento informado por escrito.

Estudiamos en [el Distrito Nacional] de la Ciudad de santo Domingo a los pacientes que   aceptaron  que a sus muestras se  le realizara el estudio, enviaron una muestra o dos de ser necesario, al programa de control de TB  para análisis de rutina: baciloscopía con la tinción de auramina, cultivo en medio Löwenstein-Jensen y sensibilidad por el método de las proporciones, además de un cultivo en medio líquido por el método MODS.

Métodos de laboratorio

Prueba de baciloscopía.

Las muestras de esputo fueron sometidas a la coloración de auramina O y rodamina. Un técnico diferente al que trabajo con MODS realizaba los extendidos los cuales eran dejados hasta secar y fijar dentro de la misma  cabina,  otro técnico  realizo las lecturas en el microscopio de inmunofluorescencia en cuarto oscuro  el mismo día del proceso en horas vespertinas  y los resultados registrados en los libros record del laboratorio de baciloscopía de TB para pacientes que enviaron muestras por primera vez o no tratados.

Descontaminación de las muestras de esputo

A  2 ml de esputo se le añadió igual volumen de la mezcla de hidróxido de Sodio-N-acetil-L-acetil cisteína-Citrato de Sodio (NaOH-NALC) como se muestra en la Fig. 1.  La mezcla  fue agitada  durante hasta lograr su  homogenización  y después se dejó   reposar entre 15-20  minutos,  después se neutralizó con solución tampón de  fosfato (pH 6,8), hasta un volumen de 14 ml.  Después se  centrifugó  por 15 minutos a 3.000 x g, el sobrenadante se decantó y el sedimento se resuspendió en 2 ml de caldo 7H9 con OADC (ácido oleico, albúmina, dextrosa y catalasa) (Becton, Dickinson and Company, Sparks, MD). De esta suspensión se  retiro  1 ml en tubos estériles de  microcentrífuga  para ser conservado de 2-8  ◦ C como backup.de seguridad, el  otro ml  se utilizo  para ser añadido  a los tubos con 7H9‐OADC‐PANTA destinados para las muestras. Paralelamente se utilizó una alícuota de 200 ul  para ser  inoculado en el medio inclinado de  LJ (Difco), e incubado a 37 ◦ C.

Medio líquido Middlebrook 7H9 :

El caldo Middlebrook 7H9 (Becton Dickinsor), se preparó usando el medio base  Middlebrook 7H9 (Difco, Detroit, MI), 0,31% de glicerol (Sigma Chemical Co., St. Louis, MO), 0,125% de Bacto casitona se mezcló los componentes con agitación constante hasta su completa disolución y se esterilizó por autoclavado a 121-124º C por 15 minutos. Se dejó enfriar y se incubó a 37º C para su control de esterilidad por 48 horas. (Becton, Dickinson and Company, Sparks, MD). Luego se Alicuotó  4.5ml del medio en tubos de vidrio estériles, preparados para las muestras y tubos con  10.8ml para la preparación de las soluciones de antibióticos y para los controles internos. Finalmente se Incubaron  a 37° C por 48 horas los tubos para verificar la esterilidad (ausencia  de turbidez).Se almacenó  el frasco y los tubos a 2‐8° C  por el periodo de un mes.

Soluciones estándar de antibióticos:

Con una micropipeta  se prepararon las soluciones de trabajo para ambos antibióticos diez veces concentrados: (4 µg/ml de  INH  y  10 µg/ml RIF). Se añadieron 100 ul  en los pozos correspondientes de la placa de 24 pozos para dar concentraciones finales de críticas 0,4 (µg/ml) para la INH y 1 (µg/ml) de RIF.

Preparación de las placas para el Método MODS:

El método MODS se realizó de manera segura en una cabina de  Bioseguridad. Para la preparación final de la placa de MODS (ver fig. 1). A un tubo con 4,5 mL de muestra resuspendida, se añadió 0,5 mL de OADC y 0,1 mL de suplemento antimicrobiano PANTA. Luego se dispensó 900 μL de la mezcla a 4 pocillos de una columna de una placa de 24 pozos a la que previamente se añadió 100 μL de cada antimicrobiano 10x, (Un pozo para INH y otro para RIF) y 100 μL de 7H9-OADC 10% a los otros 2 pocillos señalados para el control de crecimiento Una vez inoculadas todas las muestras con sus controles internos positivos y negativos, las placas fueron selladas en bolsas con cierre Ziploc  e incubadas a 37˚ C hasta su lectura a partir del día 5 de incubación.

Preparación de las cepas control positivo:

Por cada lote de muestras procesadas se utilizó dos cepas de referencia como controles positivos, una sensible a INH y RIF H37Rv (ATCC 27294) y otra MDR empleando el procedimiento descrito en el Anexo 6. Del manual de Guía para el Usuario MODS. (11)

 

Figura: 1 Decontaminación de esputo y placa de trabajo para el estudio MODS
Fuente: Guía de MODS v 12.1 14082008

Detección de crecimiento y lecturas de las placas en MODS:

Los cultivos se observaron al microscopio óptico de luz invertida (dentro de las bolsas), con el objetivo 10X  y luego con un aumento de 4x interdiario, sin incluir días feriados hasta  el día 15, y luego  dos veces por semana hasta el día 21 si las muestras eran de pacientes sin tratamiento y  hasta el día  40 si eran de pacientes con tratamiento antituberculoso, según el método.(11) Los cultivos positivos fueron identificados por la formación de los cordones característicos de crecimiento del M. Tuberculosis (Fig. 2), en medio líquido en los pocillos de detección control sin fármaco.

Un resultado positivo para las muestra clínicas procesadas por MODS, se consideró cuando se  visualizaba el crecimiento de dos o más unidades formadoras de colonia (≥ 2 UFC) en cada uno de los pozos sin droga. Un resultado negativo fue definido como la ausencia de crecimiento de unidades formadoras de colonias para el día 21 según lo describe la guía para MODS. (11) Las muestras contaminadas con bacterias u hongos, se  re-decontaminaron y reprocesaron a partir de  las alícuotas almacenadas.

 

Fig. 2: formación de cordones en el medio Líquido MODS

 

El crecimiento en el medio de Löwestein-Jensen (LJ):

Los cultivos se incubaron a 37° C y fueron examinados de la semana 2 hasta la semana 8, para visualizar la morfología y la pigmentación; (Fig. 3). Si no había  crecimiento en 8 semanas o si la contaminación estaba presente, los cultivos fueron descartados previo autoclavado en el laboratorio  cumpliendo con las normas de bioseguridad. Los cultivos procedentes de muestras BK positivos fueron incubados dos semanas más. Todos los cultivos positivos se mantuvieron 2-8° C, hasta  realizar las pruebas de susceptibilidad antimicrobiana de proporciones. Si había un resultado, diferente entre los dos métodos (MODS y LJ), se cultivaba la muestra a partir de la alícuota original guardada a temperatura de 2-8° C.

 

Fig. 3: Crecimiento de MTB en Lowenstein Jensen

Identificación de Mycobacterium tuberculosis:La técnica Standard Diagnostics SD (Fig., 4), TB MPTG Rapid fue utilizada para tipificar  los aislamientos en LJ

 

Fig. 4. Método (SD) Standard Diagnostic INC. Para la  identificación de MTB. Nótese la prueba positiva para el control Izquierda C y el paciente T.

Prueba de susceptibilidad directa MODS:

Se definió  la resistencia como el crecimiento bacteriano de ≥ 2 UFC en los pozos con drogas el mismo día en que ambos pozos sin drogas son positivos. Si se presentaba crecimiento de 1 UFC el resultado era considerado indeterminado. Se estableció una muestra como sensible como la ausencia de UFC en los pocillos donde estaban las drogas, tal como lo describe el método MODS.

Si el crecimiento resultaba  ≥ 2 UFC en uno solo de los pozos con antibióticos, ya sea el de Isoniazida o Rifampicina, definiendose como monoresistente para ese determinado fármaco. Si el crecimiento era  ≥ 2 UFC en ambos pozos con drogas, se definió  como MDR.

Prueba de susceptibilidad por el Método de las Proporciones:

Se realizaron las pruebas de susceptibilidad indirectas mediante el método de las proporciones para los aislados de los cultivos en Löwenstein-Jensen. Todos los procedimientos fueron realizados por dos miembros del personal del laboratorio de micobacteriología de un laboratorio externo de referencia,  que desconocían los resultados de las otras pruebas. Los resultados por el  método de las proporciones se obtuvieron en un promedio de 70 días, considerándose como día 1 el día desde el proceso inicial de la  toma de la muestra clínica. Todos los datos fueron introducidos y analizados utilizando el software estadístico SPSS (Statistical Package for the Social Science) versión 20 para Macintosh. Se utilizaron estadísticos descriptivos para analizar los datos tales como el promedio de la edad de los sujetos, además del uso de las tablas 2 por 2 o tablas de contingencia las cuales fueron útiles para el cálculo de las estadísticas de las pruebas diagnósticas tales como la sensibilidad, especificidad, el valor predictivo positivo (VPP) y el valor predictivo negativo (VPN), así como también  finalmente la prevalencia y la eficacia de las pruebas diagnósticas de tuberculosis. Se utilizó la prueba estadística de “Los Signos de Wilcoxon” para establecer la diferencia estadística significativa entre las medianas de los días entre el cultivo MODS y el Löwenstein-Jensen. Para establecer asociación estadística entre las variables nominales tales como el sexo y el nivel de contacto con la enfermedad se utilizó la prueba de Chi Cuadrado de Pearson.
Resultados:
Las características de las pruebas diagnósticas están representadas en las tablas 1,1.1 y 2 de acuerdo con la muestra estudiada. Estas contienen los resultados de la efectividad de las pruebas diagnósticas Löwenstein-Jensen y MODS. Los datos expresados son sensibilidad, especificidad y valores predictivos; además de la prevalencia de la enfermedad para la detección de tuberculosis.

Sensibilidad y Especificidad de las Pruebas:

De los 100 casos incluidos en el estudio 22 resultaron positivos en la prueba directa de baciloscopía (BAAR). De los 100 casos, 84 fueron categorizados como ‘’contacto sospechoso’’ y 16 fueron categorizados como ‘’contacto de alto riesgo. ’’ De los 84 pacientes con presunta tuberculosis, 16 (19%) resultaron positivos al cultivo Löwenstein-Jensen y 17 (20%) casos al medio de cultivo MODS. (Ver fig. 5). Una muestra con baciloscopía negativa tuvo poco crecimiento en el medio Löwenstein-Jensen y además estuvo negativo a MODS en repetidas ocasiones, por lo que se considero falso-positivo debido a contaminación cruzada.  Otro aislamiento o caso con baciloscopía negativa fue positivo a  MODS y a Löwenstein-Jensen. Del grupo de los 16 pacientes clasificada como ‘’contacto de alto riesgo’’ para tuberculosis, 6 (37.5%) tuvieron cultivos positivos a MODS y a Löwenstein-Jensen y 10 (62.5%) resultaron negativos a ambos métodos. El método MODS reportó tener una sensibilidad o capacidad diagnóstica para la tuberculosis de un 100% (IC del 95%; de 82.1-100%, P < 0.05). La especificidad de este método fue de un 100% (IC del 95%; de 94%-100%, P < 0.05). Su eficacia promedio es de 99% (Tabla 1 y 1.1). La prevalencia de la enfermedad fue de un 22%.

Tiempo Promedio de Positividad de las Pruebas: 

De las muestras de esputo positivo para la baciloscopía,  22 resultaron positivos para la  Mycobacterium Tuberculosis con el método de cultivo sólido utilizado  (LJ) y 23 con el método líquido (MODS). El tiempo promedio o average de crecimiento en el medio de cultivo MODS fue de 7 días [IC del 95%; de 30.75 al 37.51] vs. 34.17 días para Löwenstein-Jensen  [IC del 95%; de 6.96 al 7.04], P < 0.05). La mediana del crecimiento en el medio de cultivo MODS fue de 7 días (rango de 7 a 8 días) y la mediana del medio de Löwenstein-Jensen fue de 30 días (rango de 21 a 70) estableciéndose con estos datos una diferencia estadística significativa entre el tiempo de positividad de ambas pruebas.
Sensibilidad y resistencia a las drogas:

De 22 aislamientos analizados para la sensibilidad a  la drogas  por los  métodos MODS y Método de las proporciones se obtuvieron los siguientes resultados: para la Isoniazida la sensibilidad fue de un 74% para ambos el MODS y el método de las proporciones y  la resistencia, por lo tanto, fue de 26% para ambos métodos. Por otro lado, para la Rifampicina la sensibilidad fue de 22%. Un aislamiento (4%) resultó MODS resistente y LJ (MP) sensible. Concordancia 96% para la Isoniazida y 100% para la Rifampicina. Para ambos métodos resultaron 5 MDR, un caso monoresistente a la Isoniazida y sensible a la Rifampicina (P < 0.05).

Tabla 1. Características de los resultados para los métodos diagnósticos MODS y Löwenstein-Jensen (tabla 2 por 2):

Resultados de la prueba Diagnóstica Enfermedad:  
Presente Ausente Totales:
Positiva 22 1 23
Negativa 0 77 77
Totales: 22 78 100
 
Resultados de la prueba Diagnóstica MODS
Positiva 23 0 23
Negativa 0 77 77
Totales: 23 77 100

Se consideraron positivos los que fueron positivos con cualquiera de los dos métodos. Los cultivos negativos eran los que resultaron negativos a ambos métodos (P < 0.05). De los 22 casos en los cuales la enfermedad estaba presente el método MODS dio positivo en todos esos casos, sensibilidad = 100%. Con respecto a los 78 casos  donde la enfermedad estaba ausente el método MODS dio negativo en 77 de ellos, especificidad = 100%

 

Tabla 1.1. Índices de positividad del método diagnóstico MODS en relación al crecimiento en los medios (eficacia = 99%).

Índices de la prueba de MODS  

Valor estimado (%)

Intervalo de Confianza
Límite inferior (%) Límite superior (%)
*Sensibilidad 100.0 81.5 100.0
Valor predictivo positivo 100.0 82.2 100.0
Valor predictivo negativo 100.0      94.0 100.0
Falsos-positivos 0.0 0.0 17.8
Falsos-negativos 0.0 0.0 5.9
Prevalencia de TB 22.0 15.4 32.6
*( P < 0.05)

 

 

Tabla 2. Tiempo promedio o average en días de positividad de los resultados:

  Estadística descriptiva del crecimiento en el cultivo en días.
N Mínima (en días) Máxima (en días) Media Desviación estándar Mediana
Crecimiento en L-J 22 21 70 34.17 días 16.84 días *30 días
Crecimiento en MODS 23 7 8 7 días 0.20 días *7 días

*Se estableció diferencia estadística significativa entre el tiempo de positividad de las pruebas utilizando el estadístico de Los Signos de Wilcoxon ( P < 0.05)

La edad promedio o average de los pacientes fue de 41.9 años (mínima de 18 años y máxima de 98 años), con una desviación estándar de 18.6 años .

Tabla 3. Sexo de la muestra y su relación con el tipo de contacto con pacientes con tuberculosis

 

Tipo de contacto con tuberculosis  

Total

Sospechas de TB Sospecha de alto riesgo
Sexo de la muestra Masculino N 49 9 58
Femenino N 35 7 42
Total 84 16 100
*Chi Cuadrado de Pearson (c2) = 0.877; (P > 0.05). No se encontró relación entre el sexo de los pacientes y el nivel de exposición a la enfermedad (P > 0.05)

 

 

Tabla 4. Comparación de los resultados de sensibilidad a antibióticos Isoniazida y Rifampicina de los aislados para la M. tuberculosis determinados por MODS, Löwenstein-Jensen (MP) y concordancia con el método de referencia.

 

Resultados de sensibilidad Drogas
Isoniazida (INH)

 

Rifampicina (RPM)

 

Sensible a ambos métodos: MODS y L-J (MP) 17(74%) 17(74%)
Resistentes a ambos métodos: MODS y L-J (MP) 6(26%) 5(22%)
MODS resistente y L-J (MP) sensible *1(4%) 0
Concordancia 96% 100%
Discordancia 4% 0%
**Kappa 0.88 1.0
Total de aislados analizados (n) 23(100%) 22(100%)

Löwenstein-Jensen (MP): método de las Proporciones. *5 MDR a ambos métodos, un caso monoresistente a la Isoniazida y sensible a la Rifampicina (P < 0.05). **El estadístico Kappa describe  la fortaleza del acuerdo entre MODS y el método de referencia más allá de la ocurrida por el chance.

 

      

 

 

Figura 5. Grupos de Pacientes del estudio, resultados de los cultivos en  Löwenstein-Jensen (LJ) y  los cultivos en medio liquido (MODS). De los 115 pacientes que enviaron sus esputos, 15 muestras fueron excluidas: 3 por edad menor de 18 años, 8 por no haber firmado el consentimiento informado y 4  por ser recibidas en envases inapropiados, mal tapados o con poca cantidad de muestra. Se consideraron positivos los que fueron positivos con cualquiera de los dos métodos. Los cultivos negativos eran los que resultaron negativos a cualquiera de los métodos o a ambos. Para los pacientes con presunta tuberculosis, las 84 muestra resultaron 16 positivos al cultivo de LJ, y 17 a MODS. Una muestra con baciloscopía negativa tuvo poco  crecimiento en LJ, negativo a MODS en repetidas ocasiones, por lo que se considero falso positivo debido a contaminación cruzada. Otro aislamiento con  baciloscopía negativa fue positivo a  MODS y LJ.  Del grupo de pacientes con alto riego de TB, 6 de 16, tuvieron cultivos positivos a MODS y LJ y 10 resultaron negativos a ambos métodos.

*Pacientes con sospecha: sospecha clínica de presunta tuberculosis

** pacientes de alto riego: con  presunta tuberculosis los cuales habían estado en contacto con un paciente con tuberculosis, con uno o más síntomas (fiebre, pérdida de peso, sudoración nocturna, hemoptisis) o un factor de riesgo como es el contacto con un paciente tuberculoso, trabajador profesional de la salud o empleado en una cárcel, hospitalización durante el año anterior o excarcelado.

DISCUSIÓN

El presente estudio amplía y proporciona apoyo a los resultados obtenidos en otros  entornos (4-10,12) demostrando que la prueba MODS para detección de TB-MDR supera el método de referencia estándar Löwenstein-Jensen que se utiliza en los países en desarrollo para detectar TB especialmente en países con alta endémia por lo que su implementación y futura acreditación deben de ser implementada en nuestro sistema de salud.

Se evaluaron muestras de esputos de manera  consecutiva y recibidos en el laboratorio a partir de pacientes con sospechas de TB pulmonar y otro grupo considerado con factores de alto riesgo. Los frotis de esputo positivo (entre 1-3 cruces, n = 22) fueron establecidos debido a su visualización con el método auramina O rodamina, en el microscopio de fluorescencia.

Los resultados del presente estudio, demuestran que el método MODS cuenta con una sensibilidad y especificidad excelente,  las cuales lograron alcanzar índices del 100%. Esto nos indica que la prueba identifica la enfermedad en un 100% y discrimina a las  personas sin la enfermedad también en un 100% de las ocasiones. En un  estudio con  MODS realizado por Lazarus, et al (12), aseguran  que MODS tiene una sensibilidad de 94.12% y una especificidad de 89.39%. Al poner en práctica el ensayo MODS para pacientes con baciloscopia positiva y pacientes MDR, Eligu, et al (13) encontraron que la sensibilidad y especificidad de MODS fueron muy cercanas a la obtenida en el presente estudio (sensibilidad 95% y especificidad 100%). En un estudio de acreditación del método MODS en Perú se reportó una menor sensibilidad (14).  Así como  los reportados por Maxine, et al (15),  Además  Bowanga, et al (16), encontraron una sensibilidad de 95% y especificidad de 100% para  MODS al ser comparado con los métodos de Nitrato Reductasa y otros dos test comerciales Genotípicos.

Como prueba de diagnóstico de TB y TB-MDR, el ensayo MODS fue más rápido para identificar TB y determinar el patrón de resistencia a los fármacos Isoniacida y Rifampicina que el método de susceptibilidad convencional de las proporciones. Al ser MODS un método de cultivo en medio líquido tuvo un crecimiento mucho más rápido que el método tradicional en medio sólido Löwenstein-Jensen. La mediana de tiempo para detectar crecimiento de M. tuberculosis en el presente estudio con MODS y LJ fue de 7  y 30 días respectivamente, lo que confirma lo previamente establecido. Esto permite un diagnóstico precoz de la enfermedad  y el tratamiento adecuado con disminución de la transmisión. Minion, et al (17), encontraron un promedio de positividad de 9 días en la prueba MODS frente al método Löwenstein-Jensen, esto expresa la rapidez ventajosa de MODS sobre los demás métodos diagnósticos. Cabe destacar que los retrasos en el diagnóstico de TB es una de las causas fundamentales del aumento en la mortalidad de dicha patología. Esta detección temprana de la enfermedad con MODS especialmente la TB-MDR reduciría significativamente la letalidad producida por esta enfermedad

En el estudio se determinó el patrón de resistencia a Isoniazida y Rifampicina la cual fue del 100% para Isoniazida y 96% para Rifampicina. Los cultivos líquidos son más rápidos con disponibilidad  simultánea de los resultados de sensibilidad a los medicamentos que los cultivos sólidos,  pueden potencialmente ayudar en la eliminación de la TB activa y facilitan el uso de medicamentos preventivos (17).

Un aislamiento procedente de una muestra que era baciloscopía negativa tuvo poco crecimiento en Lowenstein Jensen, y fue considerado negativo a MODS en dos ocasiones repetidas por lo que se consideró como falso-positivo debido a contaminación cruzada. El presente estudio demuestra que MODS tiene una tasa de ocurrencia de falsos-positivos y falsos-negativos igual a cero. Moore, et al (18) encontraran que la  contaminación cruzada entre MODS, Lowenstein Jensen y MB bactT fueron igualmente bajos, con índices de 0.3 a 3.3%, lo cual permitiría el uso de medios líquidos altamente enriquecidos como el MODS para su implementación en los laboratorios que quieran adoptarlo, cuyos  resultados son comparables a lo encontrado en nuestro trabajo.

En estudios realizado por diferentes autores, (19,20) indica que el costo de MODS está entre $US 0.77 a $US 2.00)  a diferencia de  otros métodos más costosos para identificación y sensibilidad de M. tuberculosis en países de escasos recursos. En el presente estudio el valor promedio de este parámetro, sin incluir el  microscopio de US$2,000.00 fue de 2.64 dólares estadounidenses por prueba. El método solido convencional cuesta alrededor de 18.00 dólares estadounidenses por prueba,  que al ser comparado con el MODS se distingue una diferencia marcada.

Con toda la evidencia generada a partir del presente estudio podemos confirmar nuestra hipótesis de investigación que plantea que el cultivo en medio líquido MODS es más rápido, sumamente sensible, efectivo y sobretodo más económico que el medio sólido tradicional de Löwenstein-Jensen. Esto permite un diagnóstico temprano de la TB, además de determinar la sensibilidad a las drogas, lo que contribuye a un mejor manejo y control de la patología.

Cabe destacar que el MODS ha sido reconocido como un método válido para el diagnóstico de TB por la Organización Mundial de la Salud. (21) De manera que estamos frente a una gran herramienta en la lucha contra la TB en el mundo y en nuestro medio. Su alta sensibilidad de un 100% identifica su capacidad para detectar la enfermedad; y su especificidad (de también un 100%) determina su capacidad de identificar personas sanos con una eficacia promedio es de 99%. Con este primer ensayo de MODS en República Dominicana, nos encontramos en proceso de crear conciencia para que el método MODS sea un método ampliamente utilizado en aras de mejorar la capacidad diagnóstica de una enfermedad infecciosa crónica y endémica que representa un problema de salud en nuestro país.

MODS es un método que fue desarrollado en Perú y esta implementado dentro de su programa estatal de lucha contra la TB, su utilización de manera extensa debe ser una prioridad trascendental para los sistemas de salud pública en otros lugares que cuentan con una alta prevalencia e  incidencia endémica de TB y sobre todo ante el incremento de la resistencia a las drogas de primera línea (22) en República Dominicana.

CONCLUSIONES

– Este estudio es la primera evaluación del método MODS en República Dominicana; país que cuenta con una elevada endemia de la tuberculosis pulmonar.

-En los dos grupos del estudio, el ensayo MODS detectó la M. tuberculosis en el esputo con mayor sensibilidad y rapidez e identificó las cepas multidrogo resistentes en menos tiempo que los cultivos de Löwenstein-Jensen y proporciones respectivamente, con una elevada concordancia en los resultados de  la susceptibilidad tanto para los monoresistentes como para los TB-MDR

-Nuestros resultados demuestran que el ensayo MODS puede ser considerado para usarse en lugares donde existe una endemia de TB debido a su costo-efectividad y que métodos rápidos deben de ponerse en práctica para la temprana identificación de los casos. Esto se traduce entonces en un mejor pronóstico y una reducción de la prevalencia de la patología.

-A pesar de que nuestro trabajo se llevó a cabo en un grupo no muy amplio de pacientes con sospecha de la enfermedad y en otro grupo que había estado en contacto con pacientes infectados, futuros estudios más amplios son necesarios.

AGRADECIMIENTO.

Este trabajo fue patrocinado en su totalidad por fondos internos FICU 2011 de la Universidad Iberoamericana (UNIBE en República Dominicana).

Los autores quieren agradecer: A   la Dra. Jennifer García, a  los monitores de esta investigación: Gabriel Smester, Ana  Carla Suarez y Ramiro Matos por su incansable colaboración.

A la Dra. Belkis, Dra.  Mirna Font Frías, Lic. Ramona  Fulcar y  Elia Cáceres y a la Dra. Violeta González por el soporte institucional. Al personal del laboratorio de Microbiología, Licdas: Carmen Herasme y Josefina Lantigua por  el procedimiento de los métodos tradicionales. A la Dra. Iris Padilla por la colaboración con el método de las Proporciones.

Al personal Médico del departamento de Neumología del Hospital Luis E. Aybar por su cooperación en la selección de pacientes. Al personal del  departamento de Infectologia: Por su  ayuda con el reclutamiento de los sujetos de estudio y el seguimiento al consentimiento informado.
A Giannina Luna Colombo por la  ejecución  del Plan Piloto en República Dominicana. A  Ginia Montes de Oca,  por la corrección del manuscrito de la propuesta.

Las contribuciones especificas de los autores son las siguientes: Diseño del estudio Noris Salcedo Inoa y  Dr. Rubén  Darío  Pimentel; elaboración del estudio, recopilación y análisis  de datos: Noris Salcedo Inoa. Análisis de los datos estadísticos e interpretación de los mismos;   Dr. Guillén LE y Dr. Luis Eduardo Garrido.  Revisión del manuscrito final todos los autores.
Un agradecimiento especial a Jorge Coronel por sus sugerencias al documento final.
Los autores quieren expresar un especial agradecimiento al Dr. David Moore por su apoyo incondicional en el desarrollo del trabajo, así como  a la Dra. Luz Caviedes (ida a destiempo).

REFERENCIAS

  1. World Health Organization. Global tuberculosis control [en linea]. [agosto,2012]. Disponible en: www.who.int/mediacentre/factsheets/fs104/erte2011s/index.htm
  2. World health organization. Anti-tuberculosis Drug Resistance en the world. Fourth global report. Geneva, Switzerland: WHO;2004. WHO/HTM/TB 2008.394
  3. Santos-Preciado JI, Franco-Paredes C.Tratamiento Acortado Estrictamente Supervisado (TAES o DOTS) para tuberculosis en poblaciones con niveles moderados de farmacorresistencia. invest.clín. [en linea] 2005 may-jun [acceso jul 2012]; 57 (3). Disponible en: www.scielo.org.mx/scielo.php?pid=S0034…script=sci_arttext
  4. Moore DAJ, CAW Evans, RH Gilman, Caviedes L, Coronel J, Vivar A, et al. Ensayo de sensibilidad a fármacos mediantes observación microscópica para el diagnóstico de la TB. N Engl J Med. 2006; 12 oct; 355(15):1539-1550.
  5. Shiferaw G, Woldeamanuel Y , Gebeyehu M,  Girmachew F ,  Demessie D, Lema E.  Evaluación de Ensayo de susceptibilidad de drogas microscópica de observación para la detección de la tuberculosis resistente a Mycobacterium tuberculosis. J Clin Microbiol, 2007; 45 (4): 1093-1097.
  6. Caviedes L, Tien-Shun L, Gilman R H, Sheen P, Spelman E, Lee EH, et al. Rapid, Efficient Detection and Drug Susceptibility Testing of Mycobacterium tuberculosisin Sputum by Microscopic Observation of Broth Cultures. J Clin Microbiol. 2000; 38 (3): 1203-1208.
  7. Moore D, Mendoza D, Gilman RH, Evans Carlton AW, Hollm Delgado MG, Guerra J, et al. Microscopic Observation Drug Susceptibility Assay, a Rapid, Reliable Diagnostic Test for Multidrug-Resistant Tuberculosis Suitable for Use in Resource-Poor Settings .J Clin Microbiol. 2004; Vol. 42(10): 4432–4437.
  8. Oberhelman RA, Soto-Castellares G, Caviedes L, Castillo ME, Kissinger P, Moore DAJ, et al Gilman R. Improved Recovery of Mycobacterium tuberculosis from Children using the Microscopic Observation Drug Susceptibility (MODS) Method. Pediatrics [en linea]2006 Jun 2 [accesado dic 2011]; 118 (1):[100-106]. Disponible en: http://www.pediatrics.org/cgi/content/full/118/1/e100
  9. Mello FC, Arias MS, Rosales S, Marsico AG, Pavón  A, Alvarado Gálvez C,  et al. Clinical Evaluation of the Microscopic Observation Drug Susceptibility Assay for Detection of Mycobacterium tuberculosis Resistance to Isoniazid or Rifampin. J Clin Microbiol [ en linea] 2007 [ accesado 15 agosto 2007];45 (10): [3387–3389]. Disponible en: jcm.asm.org/cgi/content/short/45/10/3387
  10. Shah NS, Moodley P, Barbaria P, Salona Moodley MR, Richardson J, Scott H, et al. Diagnosis of Tuberculosis and MDR TB Using the Microscopic-Observation Drug-Susceptibility (MODS) Assay in a High HIV Prevalence Setting – South Africa. Am J Respir Crit Care Med [en linea] 2011[accesado 4 feb 2011]; 183:1427-1433. Disponible en: http://ajrccm.atsjournals.org/content/183/10/1427.full?sid=2f5bad19-d714-4a60-a534-53f09fff687f
  11. Caviedes L, Coronel J, Evans C, Gilman B, Moore D. Microscopic observation drug susceptibility assay MODS, Guía del usuario. Lima‐Perú. Disponible en: www.nejm.org
  12. Lazarus RP, Kalaiselvan S, KR John, JS Michael. Evaluation of the microscopic observational drug susceptibility assay for rapid and efficient diagnosis of multi-drug resistant tuberculosis [en linea] 2012. Disponible en: ijmm.org/text/asp?2012/30/1/64/93039
  13. Ejigu GS,Woldeamanuel YShah NSGebyehu MSelassie ALemma E. Microscopic-observation drug susceptibility assay provides rapid and reliable identification of MDR-TB. Int J Tuberc Lung Dis. 2008 Mar; 12(3):332-7.
  14. Coronel, Roper M, Mitchell S, Castillo E, Gamarra N, Drobniewski F et al. MODS accreditation process for regional reference laboratories in Peru: validation. MTBDRplus [en linea] 2010 [accesado 23 may 2012]. Disponible en: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20937190
  15. Maxine -Caws, Thi Minh D, Torok E, Campell J, Anh Thu DD, Hong Chau TT et al. Evaluation of the MODS Culture Technique for the Diagnosis of Tuberculous Meningitis. PLOS ONE(2007) ; 2 (11).Disponible en: plosone.org/…/info:doi%2F10.1371%2Fjournal.pone.000117
  16. Bwanga F,Hoffner SHaile MJoloba ML. Direct susceptibility testing for multi drug resistant tuberculosis: a meta-analysis. BMC Infect Dis [en linea] 2009 May [accesado 4 jun 2011] 20; 9-67.Disponible en:ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19457256
  17. Minion J, Pai M. Expanding the Role of the Microscopic Observation Drug Susceptibility Assay in Tuberculosis and HIV Management. Oxford Journals [en linea] 2010 [accesado 11 nov 2011]; 50(7): [997-999]. Disponible en: oxfordjournals.org/content/50/7/997.full
  18. Moore DA, Caviedes L, Gilman R.Infrequent MODS TB culture cross-contamination in a high-burden resource poor setting. Díagn Microbiol Infect Dís 2006; 56(1): 35-43.
  19. Arnez-duran RA, Aylon-anzaldo LA, Castro Soto R, Lozano Beltran D. El Método MODS, una Alternativa para el Diagnóstico de la Tuberculosis y la Detección de Cepas Multidrogoresistentes. Rev Cient Cienc Méd. 2010; 13(2):81-85.
  20. Caviedes L, moore DA,Introducing mods: A low cost-test tool for high-performance detection of tuberculosis and multidrug resistant tuberculosis. Indian J Med Microbiol. 2007; 25:87-88.
  21. World Health Organization. Non-Commercial culture and drug susceptibility testing methods for screening of patients at risk of multi-drug resistant tuberculosis-Policy Statement [en linea]. July 2010; [accesado 13 oct 2011]. Disponible en: who.int/entity/tb/dots/laboratory/whopolicy_noncommercial culture_and_dstmethods_july10.pdf
  22. Zozio Thierry, Garcia Siragusa V,  Padilla I. (2008). Research on infectious diseases: a global challenge.  Disponible en pasteur.fr/infosci/conf/sb/RIIP08/…/book_RIIP_complet.pdf  RP evaluación

 

 

 

Identificacion y susceptibilidad antifúngica de Candidas spp. en Hemocultivos de pacientes hospitalizados.

 

Publicada:2-12-2011,Anuario de Investigaciones científicas Vol. 1 No. 1, 2012.

* Licda. NorisSalcedo Inoa, * * Dr. Ivan Peñafiel, * * *  Dr. Gabriel Smester, * * * * Dra. Jenniffer García Pérez

* Prof. Investigadora, Decanato de Investigacion Academica, UNIBE.  Encargada de la Sección de Micología, del Laboratorio Clinico del HGPS.n.salcedo@unibe.edu.do, ncsalcedo@gmail.com

* * Doctor en medicina, Intensivista pediátrico,Unidad de UCI pediátrico

* * * Dr. Gabriel Smester, Medico Egresado de UNIBE

* * * * Doctora en medicina egresada de la Universidad Iberoamericana. jenniffer.garcia@gmail.com

Resumen: Se Estudiaron  retrospectivamente la incidencia de candidemia y la sensibilidad a antifúngicosde los aislados de Candida spp. de hemocultivos en el período de enero  a diciembre de 2010 en nuestro hospital General de la Plaza de la salud).
Metodos: Durante ese período, los hemocultivos se realizaron usando los sistemas BacTAlert Becton Dickinson). Para la idendificacion  de los aislados de Cándidas se utilizó el sistema semiautomatizado API 20 C AUX (bioMérieux), pruebas fisiológicas, tubos germinales y pruebas de susceptibilidad realizada con  ATB Fungus 3 (bioMérieux, Francia),
Resultados: De un total de 2,951 muestras de hemocultivos, 435(14.7%) resultaron positivas para bacterias y hongos, detectados por  el sistemaBact-Alert.Los aislamientos para ambos microorganismos, 378 (86.9%) fueron positivas a bacterias y 57(13.1%) con cultivos positivos a Candidas albicans,con edades que oscilaban entre menos de un año y más de 61 años, 28 de sexo Masculino y 28 Femeninos. .Para los 57 aislados: Candida  tropicalis 22 (38.6 %), Candida albicans 20(35.0 % %), Candida parapsilosis 12(21 %), y Candida glabrata 3 (5.3%). La prevalencia total para todas las especies de Candidas fue de 1.93  %.

 

Introducción:

En los últimos años se ha observado un significativo aumento en las infecciones fúngicas por Candida albicans y no albicans, particularmente en paciente inmunosuprimidos por oportunistas y en pacientes con enfermedades críticas14.  Al ser la sepsis y en general la infección sistémica por hongos una etiología no muy frecuente en la ruta crítica de decisiones, cuando un pacientes a riesgo no responde a un tratamiento antibacteriano, se suele aumentar cobertura contra bacterias nosocomiales multiresistentes en vez de iniciar antibióticos de amplio espectro antifúngicos. Este hecho, junto a un pobre desarrollo de la detección rutinaria de hongos en hemocultivos, han hecho que la mortalidad por fungemias sea alta y que las medidas de seguridad para la prevención de fungemias no sean en algunos casos adecuadas. Finalmente la poca cultura hospitalaria de realizar autopsias de forma rutinaria, hacen que en pacientes a riesgo, la causa de muerte en caso de infecciones, siempre se crea que es secundaria a una bacteria multiresistente en vez de un hongo no tratado correctamente.

 

En los últimos diez años ha habido un aumento significativo de candidiasis, siendo entre  la cuarta o quinta causa mas común de enfermedad nosocomial aislada del torrente sanguíneo  en America y Europa 5,7-11 ,siendo tanto la Cándida albicans como la  Cándida parapsilosis las dos causas mas frecuentes de candidemias en pacientes pediátricos. 8

La candidemia no sólo esta asociada a una alta mortalidad que supera el 30% sino que también extiende la duración de la estancia hospitalaria y aumenta los costos de la atención médica. Los sintomas clínicos  de los pacientes con candidemias causada por Candida albicans y especies de Candida no albicans son indistinguibles entre ellos pero las susceptibilidades a agentes antifúngicos es muy diferentes en cada especie aislada, habiendo surgido resistencia a los azoles en algunas especies particulares, por lo que se hace fundamental, fuera del aislamiento e identificación de la cepa de cándida, la realización de una correcta sensibilidad antifúngica par guiar la decisión clínica de antifúngicos, muchos de ellos altamente costosos o provocantes de efectos colaterales importantes. 5-8

Por todo esto, la implementación de una política de aislamiento y sensibilidad de cándida en pacientes a riesgo, con un equipo adecuado y entrenado en nuestro Hospital, creemos que ha sido un avance en la mejora del abordaje de infecciones críticas y en el siguiente estudio mostramos a conocer los resultados encontrados el año 2010, esperando que este ejemplo se difunda para un mejor aboradaje y tratamiento a nivel nacional.

 

Palabras-claves: Cándida spp, Candidemia,  agentes antifúngicos.

 

Objetivo: El objetivo del presente estudio es conocer la frecuencia de asilamientos de cada especie de Cándida de hemocultivos y su sensibilidad a los antifúngicos sistémicos, procedentes de pacientes  pediátricos y adultos internados en nuestro centro Hospitalario, haciendo énfasis y analizando la aparación de resistencia a algunos medicamentos comúnmente utilizados.

Material y métodos: Se revisaron los archivos de la Unidad de Microbiologia en forma retrospectiva entre el 4 de Enero al 31 de  Diciembre del año 2010 procedentes de  pacientes recluido en los distintos  servicios hospitalarios del complejo Hospital de la Plaza de La Salud en Santo Domingo, (República Dominicana)  para detectar todos los aislamientos de Cándida spp. de hemocultivos en el período estudiado.

La candidemia se definió como el aislamiento de Cándida spp. en al menos un hemocultivo de cada  paciente con signos y síntomas de infección. En el estudio se incluyó un único aislado por episodio. Durante ese período, los hemocultivos se realizaron usando los sistemas BacTAlert (Becton Dickinson), el cual detecta bacterias y levaduras, dando un resultado rápido preliminar mediante una alarma de sonido (pitido).

Frente al crecimiento de un hongo y su posterior identificación, la susceptibilidad fue determinada con el sistema semiautómatico ATB fungus 3, según el método estándar recomendado por el National Committee for Clinical Laboratory Standards, el cuál utiliza los siguientes antifúngicos: Anfotericina B, 5-fluorocitosina, fluconazol,  itraconazol y voriconazol. La susceptibilidad de las cepas frente a cada droga fue clasificada como sensible (S), susceptibilidad dosis intermedia (I) y resistente (R), según los criterios establecidos18-20 .

 

Control de calidad

El control de inóculo y su pureza se verificaron sembrando cuantitativamente 10 µL de la suspensión de trabajo en placas de agar sangre y CHROMAgar Candida. Las placas se incubaron durante 24-72 h a 35 °C. La densidad del inóculo era de 2 McFarland como recomienda el fabricante y que sólo se aislaba la levadura objeto de estudio.

Identificación de Candida. Las especies de levaduras se identificaron según los procedimientos estándares empleados en micología médica, analizando las características fisiológicas (tubo germinal), bioquímicas, el sistema semiautomatizado API 20 C AUX (bioMérieux), a partir de cultivos jóvenes de 24 horas de incubación en agar Sabouraud-glucosa.

Susceptibilidad antifúngica. La susceptibilidad fué determinada  para conocer su perfil de resistencia a los diferentes antifúngicos con  el sistema semiautomatizado ATB Fungus 3 (bioMérieux, Francia), el cual involucra una técnica de dilución en caldo, no colorimétrica, basada en el M27-A del CLSI, en  medio semisólido listo para su uso. Se determina la susceptibilidad a los antifúngicos en condiciones muy próximas al método de referencia (dilución en agar). La presentación en forma de galerías permite medir la respuesta a 5-fluorocitocina, anfotericina B, Fluconazol, itraconazol y  voriconazol.

 

Resultados

De un total de 2,951 muestras de hemocultivos que  fueron recibidos  para aislar bacterias y/ o levaduras, en pacientes hospitalizados en nuestro centro médico, el sistema Bact-Alert detectó automáticamente la presencia de 435 (14.7%) especies patógenas (dicho sistema no especifica en su detección temprana si es una bacteria o un hongo, debiendo realizar una identificación por otros métodos).

Del total de aislamientos para ambos microorganismos, 378 (86.9%) fueron positivos para bacterias y 57 (13.1%) para Cándida spp.

En relación a los cultivos positivos para especies de cándida, se pudo notar un amplio espectro de edad, con aislamientos desde neonatos hasta la tercera edad, siendo los grupos más frecuentemente involucrados aquellos comprendidos entre el mes de vida y los 2 años de edad (lactantes= 20 casos) y aquellos mayores de 60 años de edad  (n=13) (ver Tabla n.1).

En cuanto al sexo, se pudo notar un ligero predominio en pacientes del sexo femenino (n=32-56%) frente a 25 del sexo masculino (43%).

Las especies aisladas en este estudio fueron: Cándida  tropicalis la cual  fue la especie más frecuentemente aislada  (n=22-38.6 %); Cándida albicans (n=20-35 %); Cándida parapsilosis (n=12­21 %) y Cándida glabrata (n=3-5.3%). La prevalencia total para todas las especies de Cándida fué de 1.93  %. (Ver tabla No 2).

 

Frecuencia de casos positivos de Candidas spp según grupo de edades
 

Neonatos

≤ de un mes

C. albicans C. tropicalis C. parapsilosis C. glabrata Total n=57
1 4 2 0 7
1m -2 a 7 3 2 1 13
2a-12a 1 3 2 0 6
12a-18a 1 0 0 1 2
18a-40a 5 0 3 1 9
40a-60a 4 3 0 0 7
≥ 60a 1 9 3 0 13

 

Tabla #1 Frecuencia de casos positivos de Cándida spp, según grupo de edades

 

La susceptibilidad frente a determinados antifúngicos.

De todos los aislamientos estudiados  de cándida spp un100% presentó sensibilidad a la 5-fluorocitosina y la Anfotericina B.

El fluconazol mostró una resistencia variable según la especie, siendo la especie con mas resistencia encontrada la cándida tropicalis (n=7- 30%).

Se halló resistencia al itraconazol en dos de los aislamientos de C. tropicalis (9%).

Todos los aislamientos de C. parapsilosis 12(21%),  resultaron sensibles a todos los antifúngicos. (Ver Tabla No. 2)

 

Sensibilidad frente a los diferentes antifúngicos  en cándida spp
Especies Anfotericina B 5-Fluorucitosina Fluconazol Itraconazol Voriconazol
C. albicans n=20

N:18

 

S

 

S

 

S

 

S

 

S

N:1 S S I S S
N:1 S S R I I
C. tropicalis n=22

N:14

 

S

 

S

 

S

 

S

 

S

N:1 S S R S S
N:2 S S R R I
N:4 S S R R S
N:1 S S S S I
C. glabrata n=3

N:2

S S R S S
N:1 S S S S S
C. parapsilosis n=12 S S S S

 

Tabla No 2

Sensibilidad frente a los diferentes antifúngicos de las especies aislada

 

Discusión

En nuestro estudio, se han aislado especies de cándida, todas ellas en paciente con infecciones activas no controladas con antibióticos antibacterianos de amplio espectro costosos. Al ser este tipo de infecciones mortal en su gran mayoría sin un adecuado tratamiento, tanto la correcta identificación de la cándida, como la determinación de su susceptibilidad antimicrobiana, ens algo fundamental para la disminución de la mortalidad en este grupo de pacientes. De igual manera, la ruta crítica de cambio de antibióticos frente a un paciente con Sepsis que no responde a antibióticos de amplio espectro, generalmente introduce un azol (generalmente fluconazol endovenoso) para la cobertura de hongos al tratar de solo introducir tardíamente la anfotericina B por su alto potencial de afectación renal-tubular y la producción de hipokalemias severas de manejo, en algunos casos difícil. Además, hemos demostrado que la especie mas frecuente a nivel local es la cándida tropicalis, la cual muestra una emergente resistencia al fluconazol, habiendo detectado un total de 7 casos resistentes y 5 con sensibilidad intermedia.

Por estos resultados, que apoyan la necesidad imperiante tanto de la detección de hongos como de la determinación de la susceptibilidad, hemos venido recibiendo un mayor número de visitas del personal médico ante la clínica de Sepsis severas y hemos visto un mayor porcentaje de pacientes que se abordan de manera precoz con anfotericina B.

Creemos importante, el desarrollo en todos los hospitales públicos y privados de la misma tecnología, así como de la capacitación de personal por nuestros resultados, pues si extrapolamos la cantidad de pacientes con mortalidad por cándida a la población dominicana así como la resistencia a los azoles, al introducir estos cambios, mejoraría de manera significativa la mortalidad de estos pacientes, al encontrar además un predominio importante de dicha enfermedad en la población pediátrica temprana, que podría producir una discreta disminución en la mortalidad infantil nacional.

Recomendación: Un gran estudio prospectivo es necesario con mayor número de muestra, que arrojen mejores resultados no solo en Hemocultivos sino en diferentes  muestra clínicas sospechosas de Candidemia y/o candidosis que  puedan proporcionar mejores alternativas para iniciar una terapia empírica en los pacientes infectados con C. Albicans frente a las Candidas no albicans.

De manera preliminar, se recomienda la búsqueda rutinaria de cándida en pacientes de grupos de riesgo que no respondan a un tratamiento convencional y de haber un empeoramiento sustancial clínico, el inicio de Anfotericina B, frente a la resistencia a algunos azoles.

Conclusión:

Se registró una prevalencia de 1.93% (de un total de 2,951 hemocultivos) de aislamientos positivos para Cándidas.

Hay un incremento en la prevalencia de candidemia en los pacientes pediátricos en el periodo 2010 en nuestro hospital, siendo las del sexo femenino las más afectadas 13 de (20).

La especie de Cándida aislada con mayor frecuencia en candidemias en nuestro Hospital fue C. tropicalis, seguida de C. albicans y C. parapsilosis, y C. glabrata.

La mayor frecuencia de resistencia fue para Fluconazol; para los otros antimicóticos evaluados la frecuencia de resistencia fue baja.

La especie que presentó un perfil de mayor resistencia fue C. tropicalis seguida de C.glabrata.

Todas los aislados de C. glabrata son sensibles a voriconazol.

La única especie sensible a todos los medicamentos fue C. parapsilosis.

Bibliografia

  1. Durán MT, Velasco D, Canle D, Moure R, Villanueva R.Susceptibilidad antifúngica de aislados de Candida spp. de hemocultivos en un período de cinco años (1997-2001). Enferm Infecc Microbiol Clin. 2003;21(9):488-92. Disponible en: http://www.elsevier.es/sites/default/files/elsevier/pdf/28/28v21n10a13052332pdf001.pdf.

    2. Alvarado D, Díaz M, Silva V. Identificación y susceptibilidad antifúngica de Candida spp aisladas de micosis invasora. Influencia del porcentaje de inhibición del crecimiento para la determinación  de CIM.Rev Méd Chile [online]. 2002; 130(4): 416-423.Disponible en: http://www.scielo.cl/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0034-98872002000400009. DOI 10.4067/S0034-98872002000400009.

  1. Sanabria R, Samudio M, Fariña N, Laspina F, Ortellado de Canese J, Arbizu Ledesma G et al. Identificación de especies de candida aisladas de pacientes ambulatorios, hospitalizados, e inmunocomprometidos en Paraguay . Mem Inst Investig Cienc Salud. 2006 Diciembre; 4(2): 45-9. Disponible en www.iics.una.py/n/pdf/revista/37.pdf .

4.Alfonso C, Lopez M, Arechavala A, Perrone MC, Guelfan L, Bianchi M y los integrantes de la Red de Micologıa del Gobierno de la Ciudad Autonoma de Buenos Aires. Identificacion presuntiva de Candida spp. y de otras levaduras de importanciaclınica: utilidad de Brilliance Candida Agar.Rev Iberoam Micol. 2010;27(2):90–3. Disponible en www.reviberoammicol.com/2010-27/090093.pdf. DOI 10.1016/j.riam.2010.01.008.

5.Dolapci ITekeli AGocmen JSAysev DGuriz H. Investigation of Candida dubliniensis in Candida spp.-positive hemocultures. APMIS. 2002 May;110(5):391-5.Citado en PubMedPMID12076256.

  1. Cantón E, Viudes Á, Pemán J. Infección sistémica nosocomial por levaduras. Rev Iberoam Micol. 2001; 18: 51-55. Disponible en: http://www.reviberoammicol.com/2001-18/051055.pdf.
  2. Wey SB,Mori M,Pfaller MAWoolson RFWenzel RP. Hospital-acquired candidemia. The attributable mortality and excess length of stay.Arch Intern Med. 1988 Dec;148(12):2642-5. Citado en PubMedPMID 3196127.
  3. Zaoutis T. Candidemiain children. Curr Med Res Opin.2010 Jul;26(7):1761-8. Citado en PubMedPMID 20513207.
  4. De Rosa FG,Garazzino S,Pasero DDi Perri GRanieri VM. Invasive candidiasis and candidemia: new guidelines. Minerva Anestesiol. 2009 Jul-Aug;75(7-8):453-8. Epub 2008 Jan 24. Citado en PubMedPMID 19078900.
  5. Horn DL,Neofytos D,Anaissie EJFishman JASteinbach WJOlyaei AJ et al.  Epidemiology and outcomes of candidemia in 2019 patients: data from the prospective antifungal therapy alliance registry. Clin Infect Dis. 2009 Jun 15;48(12):1695-703.Citado en PubMedPMID 19441981.
  6. Pfaller MA, Messer SA, Moet GJ, Jones RN, Castanheira M. Candida bloodstream infections: comparison of species distribution and resistance to echinocandin and azole antifungal agents in Intensive Care Unit (ICU) and non-ICU settings in the SENTRY Antimicrobial Surveillance Program (2008-2009). Int J Antimicrob Agents 2011 Jul; 38(1):65-9.Citado en PubMed PMID 21514797.
  7. Blyth CCChen SCSlavin MASerena CNguyen QMarriott Det al. Not Just Little Adults: Candidemia Epidemiology, Molecular Characterization, and Antifungal Susceptibility in Neonatal and Pediatric Patients. Pediatrics.2009 May;123(5):1360-8.Disponible en: http://pediatrics.aappublications.org/content/123/5/1360.full. Citado en PubMed PMID 19403503.
  8. Benjamin DK JrStoll BJGantz MGWalsh MCSánchez PJDas A et al. Neonatal Candidiasis: Epidemiology, Risk Factors, and Clinical Judgment. Pediatrics.2010 Oct;126(4):e865-73. Epub 2010 Sep 27. Disponible en: http://pediatrics.aappublications.org/content/126/4/e865.full#cited-by. Citado en PubMed PMID 20876174.

14.Zaoutis TEPrasad PALocalio ARCoffin SEBell LMWalsh TJ et al.  Risk Factors and Predictors for Candidemia in Pediatric Intensive Care Unit Patients: Implications for Prevention. Clin Infect Dis. 2010 Sep 1;51(5):e38-45. Citado en PubMed PMID 20636126.

  1. Motta ALAlmeida GMAlmeida Júnior JNBurattini MNRossi F. Candidemia epidemiology and susceptibility profile in the largest Brazilian teaching hospital complex.Braz J Infect Dis. 2010;14(5):441-448. Citado en PubMed 21221471.
  2. Dimopoulos G,  Velegraki A,  FalagasME. A 10-Year Survey of Antifungal Susceptibility of Candidemia Isolates from Intensive Care Unit Patients in Greece. Antimicrob Agents Chemother.2009 Mar;53(3):1242-4. Epub 2008 Dec 29. Citado en PubMed PMID 19114672.

17.Swoboda SMMerz WGLipsetta PA.  Candidemia: the impact of antifungal prophylaxis in a surgical intensive care unit.Surg Infect (Larchmt). 2003 Winter;4(4):345-54. Citado en PubMed PMID 15012861.

  1. Adukauskiene DKinderyte ADambrauskiene AVitkauskiene A. [Candidemia in an intensive care unit]. Medicina (Kaunas).2009;45(5):351-6. Citado en PubMed PMID 19535880.
  2. Bassetti MRighi ECosta AFasce RMolinari MPRosso R et al. Epidemiological trends in nosocomial candidemia in intensive care. BMC Infect Dis.2006 Feb 10;6:21. Citado en PubMed PMID 16472387.
  3. Mahieu LMVan Gasse NWildemeersch DJansens HIeven M. Number of sites of perinatal Candida colonization and neutropenia are associated with nosocomial candidemia in the neonatal intensive care unit patient.PediatrCrit Care Med.2010 Mar;11(2):240-5. Citado en PubMed PMID 19794324.
  4. Sandven P. Epidemiology of candidemia.Rev Iberoam Micol.2000 Sep;17(3):73-81. Citado en PubMed PMID 15762797.

22-National Committee for Clinical Laboratory Standards. Reference method for  testing of yeasts. Approved standard M27-A. National Committee for Clinical Laboratory Standards.Wayne Pa 1997.

 

Infección ungueal por Aspergillus melleus, un patógeno emergente en Humanos.

Publicada:julio 2016

Autora: Lic. Noris Salcedo

Infección ungueal por Aspergillus melleus, un patógeno emergente en Humanos.

Resumen

 

En las últimas décadas los hongos no dermatofitos que producen lesiones ungueales han ido cobrando cada vez más importancia.

En recientes estudios hemos observado que además de Neoscytalidium dimidiatum y Fusarium spp. los Aspergillus se aíslan  cada vez con más frecuencia en  infecciones de las uñas. Presentamos el caso de una paciente de 47 años con infección  en uña  de pie  con afectación en lamina ungueal de varios años de evolución, con recurrencia a fallo terapéutico a varios antifúngicos. Se identifica en exámenes repetidos por sus características macro y micro-morfología a   Aspergillus melleus, un hongo aislado en los suelos de las regiones tropicales, subtropicales o templadas cálidas. Conclusión: es la segunda vez que se reporta Aspergillus melleus  como patógeno en humanos.

Palabras clave:    Onicomicosis, Aspergillus melleus.

 

Title: Aspergillus melleus nail infection, an emergent pathogen in humans.

Abstract

In recent decades non-dermatophyte fungi that cause nail lesions have been becoming increasingly important.

In recent studies we have observed that in addition to Neoscytalidium dimidiatum and Fusarium spp. Aspergillus are isolated more and more frequently in onychomycosis. In this paper we present the case of a patient of 47 years with higher infection nail right toe nail plate with involvement in several years of evolution with recurrence several antifungals therapeutic failure. It is identified on repeated examinations by their macro and micro-morphology characteristics Aspergillus melleus, a fungus isolated in soils of tropical, subtropical and warm temperate regions. In conclusion it is the second time that this fungus is reported as a pathogen in humans.

 

Key words: onychomycosis, Aspergillus melleus.

 

Introducción

 

Las onicomicosis son infecciones de las uñas producidas por tres tipos de hongos: dermatofitos, levaduras y mohos no dermatofitos. Se necesita el diagnóstico microbiológico  para su tratamiento, ya que este varía en función del agente etiológico y el tipo de lesión ungueal1

La onicomicosis causada por mohos no dermatofitos es infrecuente y, para evitar confusiones con contaminantes ocasionales, el diagnóstico siempre debe confirmarse con dos o más cultivos positivos. Las lesiones tienen un aspecto indistinguible de las producidas por dermatofitos 1,2

Entre los muchos hongos filamentosos  no dermatofitos dematiáceos productores de onicomicosis en uñas  de manos y pies esta  Scytalidium dimidiatum,  los cuales se presentan en lugares tropicales y subtropicales2, con  lesiones hiperqueratósicas e  hiperpigmentación3.

Siendo  Neoscytalidium dimidiatum más frecuente que  Scytalidium hialinum 3

Otras especies descritas con  frecuencia, y dependiendo del zona geográfica,  son los aislamientos de Aspergillus sp y Fusarium sp.4 mientras que

Escobar y Carmona- Fonseca 5, los géneros hallados fueron Fusarium en 50%, Nattrassia (Scytalidium dimidiatum) 31%, Aspergillus y Dendrophoma 7% cada uno, Penicillium y Scopulariopsis 2% cada uno y Acremonium menos de 1% y la prevalencia general de onicomicosis por hongos no dermatofítos se calculó en 12,4% en 1990-2000. Por tal razón los hongos filamentosos no dermatofitos están emergiendo como agentes de lesiones ungueales con más frecuencia en inmunodeprimidos6. Otros autores reportan3, que  los mohos no dermatofitos causantes de onicomicosis  en orden de frecuencia son: Fusarium sp, Scytalidium dimidiatum, Aspergillus (A. flavus, A. nigerA. fumigatus,  A. terreus) y Penicillium sp. pero hasta la fecha no habíamos aislado a  A. melleus como agente de onicomicosis.

El género Aspergillus se aísla con bastante frecuencia en las onicomicosis de los pies, casi siempre afectando los primeros dedos.

En nuestro laboratorio, las especies más frecuentemente aisladas son Aspergillus sp y Fusarium sp. En los últimos años (datos no publicados), hemos encontrado en la unidad de  Micología, el aislamiento en repetidas ocasiones de Scytalidium di­midiatum 3.

Caso clínico

Paciente femenina de 47 años de edad, procedente de una  área rural de la república dominicana y actualmente residente en la ciudad de  Santo Domingo, con alteraciones  de  uña dedo mayor pie izquierdo  porción distal, de cinco años de evolución. Las lesiones que consistían en manchas blancas (semejando tizas), opacas, sobre la superficie de la lamina dorsal ungueal con ligero opacicidad en  de la lámina ungueal    (Figura No.1), la cual había sido tratado con diferentes antifúngicos sin mejoría. La mujer no refirió antecedentes clínico-patológicos de importancia ni antecedentes de visitas recientes  a zonas rurales.

Examen directo

El material de las lesiones de la uña  de la  paciente obtenido por raspado con aguja 18 x 1½, eran  blanquecinas y mostraron  una superficie polvorienta blanca, el cual  fue usado para realizar un examen directo con solución de Hidróxido de Potasio y Dimethil sulfoxido (KOH –DMSO) 20%, en búsqueda de elementos fúngicos, donde se observaron  hifas hialinas  gruesas y septadas.

Cultivos

Se inoculan por duplicado cajas de Petri conteniendo medio de Sabouraud cloranfenicol (SBC), con  un  mínimo de diez  escamas procedentes de la muestra obtenida de la uña  de la paciente. Todas las muestras así sembradas se incubaron a 28 ̊ C  y revisadas cada 48 horas en busca de crecimiento. Al  4to. día se observó el crecimiento de colonias ligeramente amarillo a crema pálido, hasta su madurez  al 7mo. día con micelio granular ligeramente radiado  y reverso amarillo pálido figura No 2.

Al microscopio se observaron cabezas  Aspergilares biseriadas figura No. 3a, con vesícula ligeramente espatulada, Figura No.3 b,   no coloreadas a ligeramente marrón, y conidias  de paredes rugosas.

Una segunda muestra fue solicitada a la paciente, quien acudió al mes y sin tratamiento previo,  siendo los resultados  idénticos al primer cultivo: hifas en el examen directo y colonias amarillo pálido  en SBC, figura # 4. La paciente no se ha presentado a recoger los resultados de laboratorio y atender a otra consulta para su evaluación y tratamiento adecuado de su infección.

 

Figura No. 1: Uña con manchas blancas (semejando tizas), opacas, sobre la superficie
de la lamina dorsal ungueal dedo mayor pie izquierdo.

 

Figura No. 2: Colonias en SBC de  7 días de incubación a 28 ° C.

3 b:   Cabeza Aspergilar biseriada con vesícula ligeramente espatulada.   3 b:   Cabeza Aspergilar biseriada con vesícula ligeramente espatulada.

 

Figura # 4: 2da muestra subcultivada en Agar papa 7 días de crecimiento, colonias crema-amarilla

 

Discusión

 

A pesar de que algunos autores 7  aseguran de que las onicomicosis causadas por hongos miceliales no queratinolíticos (Scopulariopsis brevicaulis, Aspergillus spp, Acremoniun spp, etc.),  se trata de especies invasoras secundarias en uñas patológicas o alteradas por otras causas (dermatofitos incluso) o traumatizadas, apareciendo más significativamente en personas ancianas y localizándose casi exclusivamente en las uñas de los pies.  “No hay consenso general en cuanto a los criterios diagnósticos a considerar, aunque generalmente solo se acepta su papel patógeno si se visualiza el hongo en el examen directo de la muestra y se aísla en cultivo abundante, en dos o más ocasiones y en ausencia de otros patógenos conocidos “ 7.

Ballester et al.8 reportan que La frecuencia de onicomicosis por este grupo de hongos oscila según diferentes autores entre 1%-10% dependiendo de la región geográfica. Los mohos del género Aspergillus son citados por muchos autores como agentes que se aíslan con cierta frecuencia; son hongos filamentosos y hialinos, de distribución geográfica universal que forman parte de la flora anemófila; las especies involucradas son: A. versicolorA. terreusA. flavusA. nigerA. fumigatusA. unguis.

De acuerdo a Klich M A9, la descripción del agente etiológico Aspergillus melleus es la siguiente:

Subgénero: Circundati o Yukawa 19119, es un hongo poco común, Pertenece al Kingdon: Fungi, Phylium: Ascomycota .Clase: Eurotiomycetes, Orden: Eurotiales, Familia: Trichocomaceae, Genus: Aspergillus,  ha sido aislado en el polvo acumulado en colegios de Córdoba , España 10 , que hasta  ahora solo se le conocía en la industria agropecuaria. El hábitat de este hongo  ha sido reportado 9,10,  en suelos de temperaturas templadas a calientes. Se puede encontrar en cosechas de mani y otras cocechas de semillas, Sus  mayores micotoxinas que posee son: Ochratoxin A, Acido penicilinico, Xanthomegnin, Viomellein y  Vioxanthin.

Color y textura de las colonias  A. melleus 9: en 7 días en medio de agar Zapec miden de 15-35 mm. El rango de temperatura para crecer está entre 20-45ºC,  y la optima a 35ºC, las conidias  están esparcidas o ausentes,  esféricas a elipsoidal de 3-3.5 um,  con paredes suaves a finalmente rugosa, (ligeramente amarillo-oro a palido paja, lo que hace una especie distinta), el micelio es blanco a color albaricoque o marrón, con exudado ausente y reverso amarillas pálidas, colonias lentas cubierta con sedosa superficie, a menudo radialmente surcada,  dominando abundantes esclerotias amarillas  esférica o alargadas.
Al microscopio  las características de A. melleus son: cabeza  conidial  radiadas, no coloreadas a ligeramente marrón cerca del apéndice, paredes rugosas o verrugosas. La Vesícula de  20-35 um, globosa a espatulada o piriforme, cabeza conidial biseriada, métula 6-9  x 3-4 µm, cubriendo  casi toda la vesícula.

 

En un estudio realizado por zotti M y colaboradores en el 201111, para establecer las diferentes de Aspergillus en la patología ungueal, encontraron que en 44 casos de onicomicosis por hongos no dermatofitos, 26 pertenecían a Aspegillus, correspondientes a 8 especies, y consideraron como las especies más interesantes a A. persii ( 3 casos),  A. nomius (2) casos, A. melleus (1 caso), nunca antes citado en la literatura de micología medica.
Zoofti et al.  en el 2015 12  , diagnosticaron  onicomicosis en un hombre  de 68 años de edad, causada por A. melleus. De  localización en   uña del pie derecho, desarrollado varios años antes. Se identifico el hongo a través de la identificación morfológica y molecular. El paciente fue sometido a varios tratamientos sin éxito. Ellos concluyeron la infección como el primer caso de Aspergillus melleus como un patógeno para los seres humanos.

 

Conclusión

Hemos encontrado a  A. melleus produciendo onicomicosis en dedo mayor de pie en  una paciente femenina.

Es el primer caso de A. melleus en República Dominicana como emergente en infecciones humanas.

 

Referencias

  1. Garmendia JL, Viedma PI, Josune Arza JM. Onicomicosis: Diagnóstico y tratamiento. Del sistema Nacional de Salud. Volumen 32, Nº 3/2008.
  2. Arenas R. Isa Isa R. Onicomicosis por Scytalidium. Anamorfo de Natrassia mangifera. Primer caso en República Dominicana. Rev Dom Dermatol. 2002; 29(2):19­21.
  3. Salcedo N, Cabrera S. Scytalidium spp. en piel y uñas. Reporte de casos en Santo Domingo, República Dominicana, 2010-2014. Rev. Académica Biomédica Digital, Venezuela  2015 N°61.
  4. Cavallera E, Asbati M. Onicomicosis por hongos filamentosos no dermatofitos. Dermatol Venez 2006; 44: 4-10.
  5. Escobar ML, y Carmona-Fonseca J, Onicomicosis por hongos ambientales no dermatofíticos. Rev Iberoam Micol; 2003; 20: 6-10.
  6. Lima K , Machado CM, Fonsêca Nogueira II, Carvalhaes J , Delgado M, Sette R. Hongos filamentosos no Dermatofitos: onicomicosis en cuatro pacientes infectados con el virus de la inmunodeficiencia humana. Rev Iberoam Micol 2008; 25: 45-49

 

  1. Del Palacio A, Pazos C, Cuétara S. Onicomicosis por hongos filamentosos no dermatofitos. Enf Infecc Microbiol Clin 2001; 19: 439-442.

8 Ballesté R, Mousqués N, Gezuele E. Onicomicosis. Revisión del tema. Rev Méd Uruguay 2003; 19:93-106. Disponible en: http://www.scielo.edu.uy/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1688-03902003000200003&lng=es.

 

  1. Klich M A , Aspergillus melleus Yukawa 1911 in: Identification of common Aspergillus species, Centraalbureau voor Schimmelcultures, Utrecht, The Netherlands, 2002 p 58.
  2. Angulo-Romero J, García-Pantaleón FI, Mediavilla -Molina A y Domínguez- Vilches E. Catalogo de Los Hongos Aislados en el Polvo Acumulado en Colegios de Córdoba (España). Acta Botánica Malacitana, 18: 55 -64 Málaga, 1993.

 

11 Zotti M, Fay Agnoletti A, Vizzini A, Cozzani E, and Parodi A. Different species of Aspergillus involved ungual Pathologies. J.Biol. Res.2011 n.I-Vol.LXXXIV-Rubberttino-Soveriq Mannell.

  1. Zotti M, Fay Agnoletti A, Vizzini A, Cozzani E, and Parodi A. Onychomycosis from Aspergillus melleus, a Novel Pathogen for Humans. Fungal Identification and in vitro Drug Susceptibility . 2015 John Wiley & Sons A/S. Published by John Wiley & Sons Ltd, Experimental Dermatology. www.wileyonlinelibrary.com/journal/EXD

Prototheca wickerhamii. Informe de un caso ungueal y Revisión de Literatura

publicada: 16-10-2011

* Licda. Salcedo Inoa, Noris,   * * Dr. Cabrera Castillo Sandra

* Prof. Investigadora,  ncsalcedo@gmail.com

**  Coordinadora del Departamento de Dermatología Hospital General de la Plaza de la Salud (HGPS), Santo Domingo, República Dominicana

Palabras clave: Protothecosis ungueal, hiperhidrosis, Terbinafina

Introducción

La protothecosis es una infección que puede ser primaria u oportunista, causada por un alga aclorórica del género  Prototheca, con morfología parecida a las levaduras con las cuáles pueden confundirse siendo su principal característica la producción de células redondas o esporangios. Prototheca spp.ha sido descrito en muchos animales, produciendo mastitis bovina generalmente en granjas lecheras. Ha  sido aislada de varias fuentes ambientales, incluyendo plantas, suelos húmedos, de heces  de animales del suelo, fango, arroyos, aguas potables, pisos de graneros etc.En el ser humano se han implicado en infecciones cutáneas colonizando  piel, pliegues de las manos, región vulvar, en onicopatias, oído, infecciones de heridas quirúrgicas, en gastroenteritis, tracto respiratorio, hígado, sangre, meninges bursitis etc., puede afectar a individuos jovenes alrededor de 30 años como en  niños. En individuos sanos la infección es localizada y curable, pero los casos diseminados en individuos inmunocompremetidos  puede ser fatal.
Mildred Feo en Venezuela, aislo 5 cepas en un lapso de cuatro años, de un total de 320 muestra en raspado vulvar, tinea corporis, secreción de oido, pliegues de mano y onicopatía inespecífica.

En Santo Domingo, hemos encontrado dos casos de P. zopfii produciendo mastitis bovina,  siendo necesario el sacrificio de los animales infectados por  la poca  sensibilidad del microorganismo a los antifúngicos. El primer caso en humano aislado en el Hospital General de la Plaza de la Salud, fue reportado por Cabrera S. y  Salcedo N., en una paciente femenina  con hiperqueratosis ungueal y coloracion amarillenta  de uña del dedo pulgar mano derecha.

El tratamiento puede ser variable, obteniéndose éxitos con  algunos antifúngicos como Itraconazole, Fluconazol y Ketoconazol, otros recomiendan extirpación quirúrgica de la lesión, Terbinafina,  ketoconazol oral,  Anfotericina B intravenosa, con o sin  tetraciclina oral.

Caso clínico:

 Se presenta el caso de una  paciente  procedente de la Ciudad de Santo Domingo, Distrito Nacional, a las dos semanas del mes de Abril del 2010, de 32 años de edad, oficios administrativos, siempre usando zapatos cerrados, no diabética, VIH negativa, no hipertensa, no acostumbra a andar descalzo, con Onicolisis subungueal distal  de uña del primer dedo pie izquierdo, Se dentifico a Prototheca wickerhamii Fif. # 1, con los antecedentes de anemia, exceso de peso, tratada por un nutricionista, además con vaginitis recurrente por cándida con varios meses de evolucion, tratada con diferentes antifungicos.

Métodos  de diagnostico

El   examen microscópico del material obtenido por raspado ungueal fue preparado con solución hidróxido de potasio al 20%, mostró la presencia de esporangios (endosporas) en su interior. Se cultivo la muestra en Sabouraud Dextrosa Agar Cloranfenicol, obteniéndose a los seis días un crecimiento color crema  parecido a levaduras, fig # 2. Al examen microscópio con la coloración de Azul de lactofenol se observaron la típicas células de Prototheca spp.Fig. # 3.

La especie se identificó con el sistema cualitativo y semi- automático API ID 20C Aux  de (bioMérieux)  con un 89.0% de confiabilidad como Prototheca wickerhamii. Además se realizó la prueba de sensibilidad in Vitro por el  método ATB fungus 3, de (bioMérieux), resultando sensible a: Anfotericina B y  Voriconazol, resistente a Itraconazol y Fluconazol y con actividad intermedia a la 5 Flurocitocina.

Tratamiento

Se le trató con Terbinafina en forma oral una vez por día durante dos meses con lo cual se logró la desaparición completa de la lesión al  completar las 6 semanas de  tratamiento, con lo que se logró el resultado esperado Fig. # 4, debiendo monitorearse  la posible recurrencia y los efectos colaterales los cuáles no se presentaron en nuestra paciente.
Fig. #1 paciente antes del tratamiento

Fig #2 Crecimiento al 5to dia de P. wickerhamii

en Sabouraud Cloranfenicol a 30° C

 

Fig. # 3: esférulas típicas de Prototheca, teñidas con

Solución de de azul de Lactofenol Procedentes de cultivos en (SDA)

 

Fig. #4 .Después del tratamiento.

Conclusiónes:
El caso presentado constituye el segundo en el laboratotio de Micología del  Hospital de La Plaza de la Salud, perteneciente a Prototheca wickerhamii en humano.

La presentación de este caso, alerta sobre la existencia de esta patología en nuestro medio, hecho que podría derivar del uso de aguas contaminadas, la hiperhidrosis y uso de calzados cerrados por largo tiempo, como es el caso de nuestra paciente.

La realización del estudio Micològico es rápida,  pero tiende a  confundir ya que la morfología macroscópica de esta alga del género Prototheca es muy parecida a levaduras del género Candida,  tiene las mismas características bioquímicas que Cándida glabrata, por lo que los paneles de identificación para levaduras no son aconsejables, o solo reportan un porcentaje de confiabildad bajo, siendo su morfología microscópica  la característica mas relevante para su identificación.

La Terbinafina  demostró ser un  medicamento  efectivo y  permite una curación completa de la infección en menos tiempo del esperado.

Neoscytalidium dimidiatum en cuero cabelludo. Reporte de un caso en un paciente pediátrico en Santo Domingo.

Publicada 29-9-2015

Resumen

Se reporta el primer caso de tina capitis por Neoscytalidium dimidiatum, en un  masculino de 6 años de edad, quien  presentaba lesiones en forma de   placas multiples ,  escamas y áreas simulando alopecia por la rotura de los pelos en cuero cabelludo con pequeño eritema, de dos meses de evolución, recibiendo tratamientos tópicos fúngicos con ligera mejoría. El examen micológico directo de los pelos del paciente, con  KOH 20% + Dimethyl Sulfoxide, reflejaron al microscopio  hifas artrosporadas  y conidios redondeados y en los cultivos se aisló  Neoscytalidium dimidiatum. Fue manejado con griseofulvina con poca mejoría y luego con terbinafina hasta su cura.

Palabras claves: Tinea capitis, Neoscytalidium dimidiatum, tratamientos antifúngicos

Abstract

The first case of tinea capitis by Neoscytalidium dimidiatum reported in a male 6-year-old with multiple lesions in the form of plates, scales and areas simulating alopecia breaking the hairs on the scalp with small erythema, two months of evolution, getting fungal topical treatments wit  slight improvement. Direct mycological examination of the patient’s hair, with Dimethyl Sulfoxide/Potassium Hydroxide 20%, reflected the arthrospores hyphae and rounded spores, and Neoscytatidium dimidiatum was isolated by culture. It was handled with little improvement griseofulvin terbinafine and then to cure.

Keys words: Tinea capitis, Neoscytalidium dimidiatum, fungal treatment

Caso clínico

Se presenta el caso de un paciente masculino natural y procedente de Santo Domingo, de 6 años de edad, quien acudió por haber  presentado   placas irregulares de diferentes tamaños, con   escamas, pelos cortos blanquecinos, gruesos, quebradizos,   en cuero cabelludo,  la cual había iniciado hacía dos meses, recibiendo tratamientos tópicos fúngicos en otros centros  médicos, con poca  mejoría. Figura No 1.

Con escalpelo y pinza estériles, se toman muestras de los pelos infectados  y escamas de las lesiones del cuero cabelludo por sospecha de tina capitis, las cuales fueron enviadas al laboratorio de Micologia.

Figura No. 1 Obsérvese las placas irregulares de diferentes tamaños, con   escamas y pelos cortos blanquecinos.

 

 

 

 

 

 

 

Micologia:

En el  examen micológico directo con solución de hidróxido de potasio y Dimethyl Sulfoxide/Potassium Hydroxide con algunos pelos extraídos del paciente, se observaron hifas artrosporadas yconidios redondeados, sin afectación de la cutícula.  En las escamas tratadas de igual forma,  se observarán hifas delgadas hialinas irregulares ramificadas  y otras  artrosporadas que  difieren en tamaño, siendo algunas de color  más oscuras y semejando cadenas. Figura No 2. Se reporta pelo parasitado endotrix , y a la  espera del crecimiento del hongo.

Figura No. 2. Se  observaron hifas artrosporadas y conidios redondeados, tipo endotrix.

 

 

 

 

 

 

 

 

Otra porción de la muestra fue cultivada  en el medio Sabouraud cloranfenicol y Micobiotic agar el cual contiene ciclohexamida, los cuales fueron incubados a 25 ̊ C. A los pocos días se observó, Figura No 3, el crecimiento de un hongo blanco- gris, con micelio abundante algodonoso, con reverso negruzco, el cual ennegrecía en el  anverso a medida que envejecía en Sabouraud cloranfencol y no crecimiento en Mycobiotic agar.

Figura No. 3. Colonia blanco-gris de N. Scytalidium después del 4to, día de  incubacion a 25 ̊ C en Sabouraud

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

A partir del crecimiento  del cultivo  en Sabouraud cloranfenicol  al 4to dia, se preparo en una coloración de azul de lactofenol, observándose artroconidias septadas en cadenas,  otras veces sueltas, de color oscuro ,Figura No 4,   se identifica como Neoscytalidium dimidiatum.

 

Figura No. 4 coloración de azul de lactofenol, observándose artroconidias septadas en cadenas y filamentos delgados. 40X.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

El paciente recibió tratamiento con griseofulvina a 15 mg/ kg/día por seis semanas, al cabo de las cuales se logró poca  mejoría clínica al reducir la alopecia, descamación y costras. Dos meses despues de iniciado el tratamiento el paciente es recibido atendiendo al llamado de la unidad de Dermatología, para una segunda muestra y  cultivos de control del tratamiento  y confirmación del agente etiológico, con persistencia de cultivos positivos al mismo hongo. Se instaura terbinafina  en dosis de  125 mg/día por 6 semanas  lográndose la remisión de las lesiones, cura clínica al finalizar el segundo tratamiento.

De acuerdo a las indagaciones realizadas con los demás laboratorios en nuestro País, es la primera vez que se aísla N. dimidiatum en cuero cabelludo   en Santo Domingo, República Dominicana, ya que hemos encontrado esta misma entidad  en otras áreas del cuerpo 1,2, siendo  N. dimidiatum muy raro en cuero cabelludo, como es el caso aquí presentado.

Introducción

La tiña capitis  o Tiña de la cabeza,  es una infección del cuero cabelludo, que afecta mayormente a la población  pediátrica causada por las especies del género Trichophyton y Microsporum, caracterizada por placas eritematosas, escamosas. Los agentes productores de tiña capitis son las especies de Trichophyton (T. tonsurans, T. verrucosum) y Microsporum (M. canis) 3. Por lo que el hallazgo de otros tipos de hongos no dermatofitos en inusual y sobre todo de  hongos dematiáceos como es el Scytalicium, con un solo reporte mundial.

Scytalidium dimidiatum es un hongo dematiáceo que actualmente se considera la forma ananomorfa artroconidia del hongo Nattrassia mangiferae, anteriormente conocida como Hendersonulatoruloidea, hoy llamado Neoscytalidium dimidiatum. Este hongo fue descrito inicialmente como patógeno vegetal en áreas tropicales y subtropicales (4,5), vive en el suelo  en  las raíces de  árboles frutales como los viñedos, papas,  mango,  yuca, pino y plátanos. Las  lesiones fúngicas se consideran oportunistas tanto en pacientes inmunodeprimidos como en inmunocompetentes (5-10), habiéndose presentado algunos casos de infecciones subcutáneas o diseminadas (11).

Scytalidium dimidiatum afecta la piel y las uñas, con síntomas clínicos muy parecidos a los producidos por dermatofitos (2,10, 13-16). En la planta del pie pueden observarse descamación, hiperqueratosis o ambas y en los espacios  interdigitales de los dedos de los pies hay descamación y a veces maceración.

Discusión

Las infecciones más frecuentes por N. dimidiatum son las superficiales tales como las  dermatomicosis, mientras que las invasivas son raras, habiéndose descrito casos de infección subcutánea, micetomas, lesiones faciales, sinusitis maxilar, endoftalmitis, en pacientes inmunodeprimidos o después de una lesión traumática con ruptura de la barrera epidérmica de protección 5-9 . Uno de los factores predisponentes más frecuente es la  diabetes, la cual  ha sido la condición más importante con  lesiones subcutáneas, abscesos de tobillos y en seno maxilar 12-15. Sigler et al 16, reportaron un caso invasivo de un masculino diabético que estaba bajo tratamiento con esteroides.

Se han encontrado otros factores  asociados, como es  la cirrosis, el trauma, la terapia inmunosupresora, la quimioterapia y el trasplante de órganos. Otras localizaciones son  abscesos del sistema nervioso central, osteomielitis, cerebral, en región abdominal, pleural, pulmonar entre otras.6, 15.

En relación al cuero cabelludo solo un caso ha sido reportado por Frankel & Rippon  en 1989 16, sin embargo  no mencionan la realización del examen microscópico directo.

En el presente reporte hemos encontrado que los pelos de las lesiones tratados con KOH al 20 % + DMSO, se observaron parasitados tipo endotrix, con hifas septadas  y artroconidias en su interior sin afección de la parte exterior

Los métodos micológicos recomiendan inocular las muestras clínicas sospechas de infecciones por hongos en el medio común Sabouraud cloranfenicol, en el cual puede crecer cualquier hongo, y en el medio Micobiotic agar, en el que podría crecer un

Dermatofito, pero este último medio  inhibe varios hongos incluyendo a Scytalidium spp.2, 4, 11, 12, 18,19.

En cuanto a los tratamientos a usarse Palacio y colaboradores 17, aseguran que la tinea capitis es una enfermedad pediátrica que requiere tratamiento oral (los antifúngicos deben penetrar dentro de los folículos). Los antifúngicos tópicos utilizados como una única opción de tratamiento no conducen al éxito terapéutico. En las dermatomicosis y en especial en las  tineas capitis, la identificación de la especie es en ocasiones determinante en la elección del tratamiento antifúngico, ya que las infecciones por Microsporum canis  sólo pueden ser tratadas con éxito con griseofulvina o itraconazol 17.

Los hongos dematiáceos como es el caso de N. dimidiatum, presentan resistencia a los tratamientos por compuestos antimicrobianos y principalmente a los antimicóticos por la capacidad de ellos de producir melanina la cual juega un rol importante para la resistencia, por lo que han sido catalogados como difíciles de curar 2,13,18

La  terapia para las infecciones causadas por N. dimidiatum está todavía en estudio 15,  y nuevos agentes antifúngicos y opciones terapéuticas alternativas necesitan ser exploradas.

 

Conclusiones y Recomendaciones

 

-Hemos encontrado N. dimidiatum en cuero cabelludo de un paciente pediátrico en  exámenes microscópicos directos y cultivos   con crecimiento en Sabouraud cloranfenicol y no crecimiento en medios con ciclohexamida.

– recomendable que en lo adelante se inoculen las muestras procedentes de cuero cabelludo en ambos medios, aun  Scytalidium es inhibido por la ciclohexamida nos sirve como control de estos dematiáceos.

-Es importante recalcar que el diagnóstico clínico presuntivo  de las micosis debe confirmarse con el estudio micológico (KOH y cultivo) y que ambos  en especial cuando se trata de hongos contaminantes deben ser repetidos para confirmar el diagnostico.

-A los clínicos y profesionales del laboratorio de no desechar la posibilidad de este  tipo de hongos en las muestras de cuero cabelludo, que muchas veces (al observar hongos no  comunes), son descartadas y reportadas  como negativas.

 

Autora: Noris Salcedo, Bioanalista /Micóloga.

 

AGRADECIMIENTO: A  la Dra. Sandra Cabrera Castillo por los datos clínicos suministrados para el presente trabajo y al Dr Luis Zaror por sus atinadas correcciones al manuscrito.

Referencias

  1. Arenas R. Isa Isa R. Onicomicosis por Scytalidium. Anamorfo de Natrassia mangiferae. Primer caso en República Dominicana. Rev. DomDermatol. 2002; 29(2):19-21.
  2. Salcedo Inoa N, Severino B, Cabrera castillo S. Sinusitis micótica no invasiva y lesiones ungueales por Neoscytalidium dimidiatum. Comunicación de dos casos en República Dominicana. Académica Biomédica Digital, Venezuela. Julio- Sept. 2013, No.55
  3. Sánchez-Saldaña L , Matos-Sánchez R, , Kumakawa Sena H,. Infecciones micóticas superficiales. Dermatología Peruana 2009, Vol 19(3
  4. Vásquez Flores H, Mendoza Rodríguez C, Arenas R. Onicomicosis por Scytalidium sp. Revisión de infecciones por Scytalidium (Scytalidiosis) a propósito de un caso de melanoniquia. DermatologiaRevMex. 2005; 49:168-73.
  5. Einav H, Izhar U,Benenson S, Admon D,  Hidalgo-Grass C,Polacheck I, et al. Invasive Scytalidium dimidiatum Infection in an Immunocompetent Adult. J ClinMicrobiol.[enlínea]2009 Abril; 47(4):1259-63. Disponibleen: http://jcm.asm.org/cgi/reprint/47/4/1259.Citado en PubMed PMID 19193834.
  6. Lacaz da Silva C, Pereira A,Heins-Vaccari EM, Cucélc, Benatti C, SpinaNunes R, et al.Onychomycosis caused by Scytalidium dimidiatum. Report of two cases. Review of the taxonomy of the synanamorph and anamorph forms of this coelomycete. Rev. Inst. Med. trop. (S. Paulo). 1999; 41 (5): 319-23.
  7. NascimentoPontarelli L,Hasse J, Galindo Cdo C, Coelho MP, Nappi BP, Ivo-Dos-Santos J.  Case report onychomycosis by Scytalidiumdimidiatum: Report of two cases in Santa Catarina, Brazil. Inst. Med. trop. (S. Paulo). 2005; 47(6):351-3.
  8. Álvarez P, Enríquez AM, Toro C. Dermatomicosis de importación por Scytalidium dimidiatum: a propósito de tres casos. RevIberoamMicol. 2000; 17: 102-10.
  9. Padin C, Fernandez-Zeppenfeldt G, Yegres F, Richard-Yegre dimidiatum: hongo oportunista para el hombre y árboles de Mangifera. RevIberoamMicol. 2005; ; 22: 172-3.
  10. Morris-Jones R, Youngchim S, Hextall JM, Gomez BL, Morris-Jones SD,
    Scytalidium dimidiatum causing recalcitrant subcutaneous lesions produces melanin. J ClinMicrobiol.2004; 42(8):3789-94.
  11. St-GermainG ,Summerbell Identifying filamentous fungi.  A clinical Laboratory Handbook.  Edicionen Ingles.  Star Publishing; 1996.  P.188-9.
  12. H.Medically Important Fungi A guide to identification 4th edition, ASM Press, Washington DC; 2002: 211-212.
  13. Bonifaz A. Infecciones por Scytalidiumsp. y Hendersonulatoruloidea, en Micologia Medica Básica. 4ta. Ed. Mexico, D.F.: McGraw-Hill interamericana; 2012. p. 407-8.
  14. Crespo-Erchiga V, Martínez-García S y Martínez-Pilar L. Dermatomicosis por Scytalidium. 2005; 20(10):498-503.
  15. Sigler L, Summerbell RC, P,ole L, Wieden M, Sutton DA, Rinaldi MGet al.Invasive Nattrassiamangifera e Infections: Case Report,Literature Review, and Therapeutic and Taxonomic Appraisal. J ClinMicrbiol. 1997 Feb; 35(2): 433-440.
  16. David H. Frankel & John W. Hendersonulatoruloidea infection in man. Mycopathologia.. 1989; 105:175-186.-
  1. Palacio A , Garul M, Cuétara MS. Tratamiento actual de las dermatofitosis . Rev Iberoam Micol 2002; 19: 68-71.
  1. Salcedo Inoa N, Cabrera Castillo S. Scytalidium en piel y uñas. Reporte de casos en Santo Domingo, República Dominicana, 2010-2014. http://vitae.ucv.ve/index_pdf.php?module=articulo_pdf&n=5086&rv=117

 

 

Cunnigamella bertholletiae y Mucor sp. en senos paranasales. Reporte de dos casos.

Rev. Académica Biomédica Digital, Venezuela. Octubre-Dic. 2013, No.58. http://noris-salcedo.blogspot.com.

1. Noris Salcedo Inoa,  2 Félix  Quezada,  3Marlene Cosme.  1- Sección de Micología,  Hospital General de la Plaza de la Salud. Santo domingo RD. ncsalcedo@gmail.com

2- Departamento de Otorrinolaringología y Cirugía de Cabeza y Cuello, Hospital Salvador B. Gautier. Santo Domingo.

3- Residencia de Medicina Interna, Hospital Salvador B. Gautier. Santo Domingo.

publcado:Rev. Académica Biomédica Digital, Venezuela. Octubre-Dic. 2013, No.58. http://noris-salcedo.blogspot.com.

 

Resumen.

Presentamos  dos casos de Mucormicosis diagnosticados en dos centros de salud de Santo Domingo República Dominicana.  La forma rinosinusal se diagnosticó en los 2 pacientes, los cuales presentaban diabetes mellitus. Uno de los pacientes fue  tratado con Fluconazol  aunado a cirugía nasosinusal, mientras que el otro solo con Fluconazol. Los exámenes micológicos, histopatológicos e imágenes fueron  realizados.

Palabras claves: Mucormicosis, Diabetes, Senos paranasales, sinusitis fúngica.

Abstract

Cunnigamella bertholletiae and Mucor sp. in paranasal sinuses. Report of two cases.


We present two cases of Mucormiycosis diagnosed in two health centers of Santo Domingo Dominican Republic. The rinosinusal form was diagnosed  in 2 patients, who were presenting  diabetes mellitus. One of the patients was treated with Fluconazol and sinus nasal surgery, whereas other with Fluconazol. The mycologycal, histopatological and image were realized.

Key Words: Mucormycoses, Diabetes, Paranasal Sinus, fungal sinus

 

 

 

 

INTRODUCCIÓN

 

La Mucormicosis es una infección  aguda, generalmente mortal, causada por  hongos del  subphylum Mucoromycotina (anteriormente llamado Zygomycetes). Los zygomicetos es una clase de hongos que comprende 2 ordenes: Mucorales y Entomophthorales. Los Mucorales, habitualmente producen infección en pacientes inmunocomprometidos y tienen una evolución aguda y los Entomophthorales producen infecciones crónicas en pacientes inmunocompetentes

La mayoría son Mucorales, los cuales contienen los más comunes  patógenos humanos

incluyendo  RhizopusMucorCunninghamella  y  Lichteimia (anteriormente  Absidia) 1-4  . Las principales infecciones micóticas  que producen los Mucorales son: la  sinusitis/rinocerebral, pulmonar, cutánea/subcutánea, gastrointestinal, y zygomicosis diseminada. Estos hongos  saprofitos oportunistas con frecuencia se encuentran en el suelo, en la vegetación descompuesta 2.3, 5 y la inhalación de esporas provee el acceso a la mucosa oral / nasal del humano.

 

Son más propensas a contraer esta infección, principalmente los  pacientes con Diabetes Mellitus descompensados con cetoacidosis (en un 85%), siendo el segundo factor predisponente de las enfermedades hematológicas (10%), los linfomas y sobre todo las leucemias, en particular debido a la neutropenia que generan en neutropénicos o pacientes  immunosuprimidos  (leucemia, linfoma con neutropenia prolongadas, trasplantados, uremia, medicamentos que alteran la respuesta inmune: corticoides, etc.)1, en quemados, desnutridos y prematuros 3, siendo dicha infección poco frecuente en individuos sanos.

La evolución de una Mucormicosis es aguda y llega a alcanzar una mortalidad de hasta el 90%. La forma cutánea es una entidad rara que se puede presentar en forma primaria, ser secundaria a casos rinocerebrales o consecuencia de diseminación de la enfermedad 1, 3, 5,6.

 

CASO 1

Paciente femenina de 64 años de edad, casada, dedicada a la docencia por 35 años, con antecedentes mórbidos de diabetes tipo 2, insuficiencia vascular venosa periférica e hipertensión arterial de larga data bajo tratamiento,  residente en santo domingo, República Dominicana. La cual acude a nuestro centro el 10 de Mayo del  2007, por dolor intenso en hemicara derecha y ocular derecho. Siendo evaluada por diferentes especialistas y realizándose tomografía axial computarizada de nariz y senos paranasales (TAC),  Figura # 1,  reportando ocupación de seno maxilar derecho. La paciente  había sido tratada clínicamente durante 3 meses sin mejoría de su cuadro clínico

 

 

Fig # 1 TAC de nariz y senos paranasales con corte axial mostrando ocupación de seno maxilar derecho y erosión de la pared medial del mismo.

La paciente es llevada a quirófano el 23-6-07  con Diagnostico pre quirúrgico de: lesión ocupativa de la fosa nasal y seno maxilar derecho,  se decide realizar cirugía  con el siguiente Reporte quirúrgico:

Se realizo Sinusotomia naso antral derecha + etmoidectomía derecha. Bajo anestesia general se realiza incisión sublabial, osteotomía antral, exceresis de material purulento, se lava abundantemente, se retiran celdillas etmoidailes y material polipoide. Se deja dren sublabial.   

Estudio Micológico:

 

En el caso que estamos relatando, se extrae  material quirúrgico de Antro y fosa  nasal derecha  con sospecha de Micosis, se envía al laboratorio donde se procede a realizar exámenes en fresco e improntas  del tejido, para coloraciones y   cultivos en medios adecuados.

Dentro de una cabina de flujo laminar clase II, El material polipoideo se trocea con bisturí estéril para ser utilizado en examen  directo con solución de Hidróxido de potasio (KOH) al 20%, otras porciones se inoculan en medios sólidos de Sabouraud Dextrosa Agar y Micobiotic Agar que contiene ciclohexamida, los cuales se incuban a 37 ˚C y 25 ̊ C despues de haberlos sellarlos con papel Parafilm.

Con el tratamiento de la muestra con solución de KOH, al microscopio se observaron hifas  hialinas anchas, cenocíticas (no tabicadas) y ramificadas en ángulo recto, lo que provee un diagnóstico presuntivo de Mucormicosis, Figura # 2.

En los cultivos del espécimen en Sabouraud Dextrosa Agar con adición de cloranfenicol  incubados a 37º,  se observó el crecimiento de un moho despues del segundo día,  al principio blanquecino en el anverso que luego se torna grisáceo-marrón,  pálido en el reverso, que llenó el espacio  entre la superficie del Agar y la tapa de la placa de Petri en 4 días (Figura # 3). No hubo proliferación de hongos en las muestras  incubados a 25 ̊ C ni en las que fueron  inoculadas en Micobiotic Agar, por contener este  Ciclohexamida que inhibe el crecimiento de estos hongos.  Una preparación con azul de lactofenol en porta objeto  de un inoculo de la colonia fue vista al microscopio la cual  reveló  hifas aseptadas, largos esporangióforos  terminados en una vesícula  hinchada, redondeada a  ligeramente ovalada, con espículas  cubriendo casi toda la superficie del  esporangio (Figura 4 a, b), identificándose como Cunnigamella bertholletiae. Los  cultivos bacteriológicos fueron negativos y el estudio histopatológico reporta la presencia de hifas micóticas  al igual que el micológico.

 

 

Fig # 2: Tejido nasal visto al microscopio
Con solución de  KOH 20%. Obsérvese hifas cenocíticas características de un  Mucor sp.

Fig. # 3 Cultivo de 3 días  en Sabouraud dextrosa a 37 ̊ C

B
A

Fig. #4 Coloración Lacto-fenol azul de algodón 400 x, al segundo día de crecimiento. En (a) se observa Esporangióforo terminado  en vesícula inmadura, redondeada o ligeramente ovalada, cubierta con dentículos distribuidos alrededor de la superficie .En (b). Hifas cenocíticas.

 

Luego de estos hallazgos micológicos se inicia tratamiento antimicótico con  Fluconazol de 150 Mg. cada 24 horas durante 7 días.

Se le da seguimiento clínico y radiológico a los dos meses postquirúrgico en la cual se evidencia una evolución satisfactoria, demostrada  al realizar un nuevo estudio tomográfico (Fig. 5) donde se observo el antro maxilar despejado, con cambios propios de la cirugía.

 

 

Fig. # 5 TAC de nariz y senos paranasales post quirúrgica de corte coronal observándose el antro maxilar  limpio.

 

Caso Clínico 2

Paciente Masculino de 64 años de edad, conductor de carro publico con antecedentes mórbidos de diabético tipo 2, residente en santo domingo, República Dominicana, el cual acude por presentar lesión ulcerada en surco nasal izquierdo la cual comunica con seno maxilar ipsilateral con abundantes secreciones, edema periorbitario con afección visual y perdida de tejido de alar nasal de 1 mes de evolución. Al examen físico de otorrinolaringología se encuentran como hallazgos positivos una lesión comunicante con seno maxilar izquierdo con salida de secreciones amarillentas, edema periorbitario con afección visual, ulceración de ala nasal izquierda y abundantes secreciones amarillentas en fosa nasal. Una tomografía axial computarizada (TAC figura # 6) de nariz y senos paranasales revela tejido en seno maxilar izquierdo que fistulisa hacia la pared anterior del maxilar con datos de producción de gas,  ausencia de la parte más anterior de la pared superior del seno maxilar y extensión a orbita ipsilateral.

Fig. # 6, TAC de nariz y senos paranasales con corte coronal mostrando invasión ocular izq. Así como afección de tejidos blando a de la hemicara izq, causada por la ulceración.

Antecedentes de traumas, transfusiones, alérgicos y cirugías previas negadas. Hábitos tóxicos café desde la niñez, tabaco desde la adolescencia hasta hace 6 meses que lo abandono, alcohol habitualmente. Previa evaluación se decide su ingreso para fines de diagnóstico y tratamiento.

En Fecha 27/7/13, es llevado a quirófano con Diagnostico pre quirúrgico de: sinusitis complicada con el siguiente Reporte quirúrgico:

Operación realizada: uncinectomia + antrostomia maxilar + toma de biopsia  y cultivo + lavado de seno maxilar izquierdo. Con los siguientes hallazgos: Pared medial del maxilar en meato inferior erosionada, Abundante tejido rodeado de secreciones amarillentas dentro del seno maxilar izquierdo, La lesión invade cornete medio, Techo de seno maxilar izquierdo erosionado y flotante, Lamina papirácea integra.

Técnica

Previas medidas de asepsia y antisepsia y bajo anestesia general inhalatoria se introduce lente de 30 grados en fosas nasales y comunicación en surco naso geniano, se realiza uncinectomia y antrostomia maxilar amplia, se toma biopsias y cultivos de dentro de seno maxilar y fosa nasal izquierda, se retira lamina ósea flotante perteneciente al techo de maxilar, pared posterior no se visualiza por abundante tejido ocupando maxilar. Se lava y se deja gaza furosinada.

Examen físico

Ulceración en mejilla, ala nasal izquierda y surco nasogeniano izquierdo con comunicación a seno maxilar ipsilateral con secreciones y afección ocular, como vemos en la siguiente  imagen ( fig. # 7)

 

Fig. # 7. Paciente con ulceración en mejilla y surco naso geniano con comunicación a seno maxilar izquierdo.

Reporte quirúrgico

Diagnóstico pre quirúrgico: sinusitis complicada
Diagnóstico post quirúrgico: sinusitis complicada vs sinusitis micótica
Operación realizada: uncinectomia + antrostomia maxilar + toma de biopsia  y cultivo + lavado de seno maxilar izquierdo.

Hallazgos:

-Pared medial del maxilar en meato inferior erosionada
-Abundante tejido rodeado de secreciones amarillentas dentro del seno maxilar izquierdo
-La lesión invade cornete medio
-Techo de seno maxilar erosionado y flotantes
-Lamina papirácea integra

Técnica

Previa anestesia general inhalatoria se introduce lente de 30 grados en fosas nasales y comunicación en surco naso geniano, se realiza uncinectomia y antrostomia maxilar amplia, evidenciando hallazgos antes mencionados, se toma biopsias y cultivos, se retira lámina ósea flotante perteneciente al techo de maxilar, pared posterior no se visualiza por abundante tejido ocupando maxilar. Se lava y se deja gaza furosinada. Con la sospecha de un hongo y como medida preventiva se le indica Fluconazol de 400 mg cada 24 horas hasta obtener los resultados de la biopsia.
Diagnostico de laboratorio:

Las biopsias  fueron enviadas  a realizar estudios tanto microbiológicos, histopatológicos como micológicos. Las muestras de tejido fueron cortadas con  bisturí  estéril en pedazos pequeños  y separadas en dos partes. Una porción fue examinada usando la microscopia directa  después de la digestión con KOH  Fig. # 8,  se encontraron múltiples hifas cenocíticas (sin tabiques) y dicotómicas. Las porciones restante de la muestra fueron  inoculadas en  Sabouraud  dextrosa  Agar cloranfenicol y Micobiotic Agar, e incubados en 25 º C y 37 º C con chequeo diario. Una colonia de crecimiento rápido, algodonosa, de color blanco a amarillo tornándose gris  a medida que envejecía,  se observó  en  los medios de Sabouraud Agar  a 37 º C, pero sin proliferación  en el Micobiotic Agar y en los que habían sido  incubados a 25 º C,  Fig. # 9.

Se aíslo e identificó un Mucor sp. por las morfologías macroscópicas y microscópicas observadas en preparaciones  con azul de lactofenol, en la cual se visualizaron desarrollo de abundantes  esporangioforos los cuales eran simples  largos y erectos,   terminando  en una esporangia globosa, multisesporada , Fig. #10. Los cultivos microbiológicos resultaron negativos y la histopatología revelo la presencia de hifas aseptadas.

Fig.  # 8. Muestra de tejido tratada con KOH.
Se observa hifas anchas sin septos.

Fig. # 9  cultivo de  5 días de crecimiento en
Sabouraud Dextrosa Agar Cloranfenicol a 37 ̊ C

Fig. #10 .Preparación del  cultivo en coloración de azul de   lactofenol,
mostrando esporangia, columella y  esporangiosforos de Mucor sp

Con este diagnostico se le indica tratamiento con Anfotericina B desoxicolato,  el cual fue rechazado por el paciente,  se inicia la realización de estudios complementarios para determinar viabilidad del globo ocular afectado y opciones de reconstrucción, sin embargo el paciente solicita su de alta a petición en contra de las recomendaciones medicas.

DISCUSION

Los zygomicetos son una clase de hongos que producen  infección poco frecuente en individuos sanos, ocasionalmente patogénicos en animales domésticos. Las  esporas inhaladas provee el acceso a la mucosa oral y nasal, las cuales en personas sin compromiso inmunológico,  son eliminadas por fagocitosis, mientras que en el huésped inmunocomprometido puede haber germinación y formación de hifas con invasión vascular. Las esporas de varios de estos miembros han sido ampliamente detectadas en el aire6- 8. Esos hongos saprófitos se encuentran de manera natural en pan, vegetales, frutas, y se puede encontrar como parte de la flora normal en el organismo, especialmente si las muestras son de boca, garganta, nariz e incluso heces en un adulto sano. El hongo tiende a crecer en la lámina elástica de los vasos sanguíneos disecando los mismos, provocando trombosis localizada y necrosis 8. Como se ha mencionado con anterioridad, las infecciones de este tipo se dan en los pacientes que tienen algún tipo de inmunocompromiso, tal es el caso de pacientes con VIH, diabéticos poco controlados, con algún tipo de cáncer y en general, o  por algún tipo de neutropenia. Estos hongos pueden aparecer asociados a La diabetes en un 80% a 60%, en general cuando en el  estudio histopatológico aparecen hifas no septadas con angulación  de sus hifas, entonces se puede presumir del diagnóstico de Mucormicosis.

La forma rino- orbitaria es considerada un estadio temprano de  la presentación Rinocerebral, que al ser sometida a un tratamiento médico y quirúrgico oportuno e individualizado presenta un mejor pronóstico 7. Parimalam y colaboradores 9,  afirman  que la Mucormicosis Rinocerebral (RCM) es la más común de las variantes clínicas y envuelve a senos paranasales y cerebro. La supervivencia era cero antes del año 1955. Despues de advenimiento de la Anfotericina, la supervivencia de   pacientes con sinusitis invasiva sin compromiso cerebral era reportada tan alta como 50-80%. La infección se expande en el cerebro y el porcentaje de fatalidad puede exceder 80%. Un temprano diagnostico y tratamiento  multidisciplinario solo  acerca a la reducción de la  morbilidad y mortalidad. En estudios anteriormente  realizados 5,7, 10, resulto que la edad  media fue  de  46 años  predominantemente hombres (80%), sin embargo puede también  presentarse en niños y lactantes.

El diagnóstico de sinusitis fúngica  está basado en una alto índice de sospecha clínica de pacientes inmunocomprometidos con fiebre, congestión nasal, descarga y dolor facial. Si el hongo crece de una muestra tomada con hisopo, esto añade peso al diagnostico, pero la biopsia es requerida para la confirmación.11-14. En los casos aquí presentados las biopsias fueron realizadas y se confirma además el hongo por exámenes de la muestra clínica en fresco, cultivos, estudios de imágenes. En similares estudios realizados por Tony et al encontraron en una revisión de  17 casos de infección debido a Especies de Cunninghamella  en humanos,  solo tres sobrevivieron. Ellos reportaron un caso de sinusitis paranasal debido a C. bertholletiae en una paciente de edad avanzada quien tenía diabetes mellitus y mielodisplasia 15, mientras que Pastor et al 16, aseguran que las  infecciones causadas por  Cunninghamella son  menos frecuentes que aquellas que son  producidas por otros géneros de Mucorales, por ejemplo, Rhizopus y  Mucor, pero el   average de  mortalidad es más alto (76%), en general la infección causada por los miembros de Mucorales son amenazantes y desbastadores para la vida, requiriendo pronto y agresivo tratamiento16. Los organismos de la clase Zygomycetes fueron primero observados que causaban  enfermedades en los seres humanos en publicaciones del siglo XIX. Hace varias décadas la información estaba basada principalmente en la  morfología en los tejidos y raramente  confirmada por  cultivos. La  morfología encontrada en tejidos es la de hifas   cenocíticas, que sugieren infección con uno de los Mucorales. La mayoría de los casos reportados no tienen  identificación por cultivos y eran reportados como Mucormicosis 15.
Si el diagnostico no es hecho tempranamente, la diseminación puede ocurrir. La terapia debe ser efectiva  e iniciarse inmediatamente y requiere combinación de drogas antifúngicas  siempre orientada a cada caso individual,  intervención quirúrgica y reversión de los factores de riesgo subyacentes. La Anfotericina B ha sido siempre el tratamiento de elección para la Zigomicosis, sin embargo, resulta neurotóxico. Fármacos de la familia de los azoles tales como itraconazol, posaconazol, Ketoconazol y  Fluconazol no han demostrado tener actividad confiable contra Mucor, sin embargo se consideran medicamentos de segunda elección en caso de que los polienos no sean bien aceptados por el paciente  6,8,10.15, 16

La terapia antifúngica ha producido resultados variables, dependiendo del organismo y la droga seleccionada. Se ha hecho evidente que los azoles no deberían ser usados en el tratamiento de los  Zygomycosis debido a la carencia tanto  in vitro como in vivo de  la susceptibilidad 17.

De acuerdo con Calabria y colaboradores 18, para evitar  desenlaces fatales en las Mucormiscosis, debe realizarse un diagnóstico temprano de la infección, aunado  al desbridamiento quirúrgico de las lesiones.

En un caso presentado por Jason et al 19 , de peritonitis debido a  C. bertholletiae,   este fue encontrado ser resistente  in vitro a  Anfotericina B, 5-fluorocytosine, fluconazole, itraconazole, ketoconazole y  voriconazole, aun el paciente fue tratado exitosamente con voriconazol y remoció       n del catéter.

En resumen nosotros presentamos dos casos de pacientes diabéticos con Mucormicosis en senos paranasales en dos Centros  de salud en Santo Domingo RD.

En el  caso  1  aquí presentado la paciente fue tratada exitosamente sin adquirir ningún tipo de  complicaciones siendo evidenciada por una TAC libre de enfermedad. A pesar de que nuestra paciente no se le administro la dosis correcta establecidas por las guías, se obtuvo resultados satisfactorios, por lo tanto se evidencia que el tratamiento quirúrgico mostro un rol importante en la remisión de las lesiones fúngicas además de la temprana sospecha de Mucormicosis.  Mientras que en el otro caso el paciente se rehusó a obtener tratamiento con Anfotericina B y  se le dio su de  alta a petición del paciente, siendo incierta la evolución de este. En ambos  casos  encontramos (como lo han reportado varios autores),  el factor predisponente asociado para el desarrollo de la Mucormicosis fue la Diabetes.

Agradecimiento

Nosotros queremos agradecer al Dr. José A. Cerda Taveras,  por su gran aporte al presente trabajo por la  revisión de datos clínicos de uno de los casos.

 

REFERENCIAS

  1. Bonifaz A, Teresa Barrón y Juan Collazo-Jaloma. Zigomicosis. Mucormicosis cutánea en paciente con leucemia. Actas Dermosifiliogr 2002; 93(8):514-7.
  2. Gomes M Z. R., Lewwis R E. , Kontoyiannis D P. Mucormycosis Caused by Unusual Mucormycetes, Non-Rhizopus, -Mucor, and -Lichtheimia Species. Clinical Microbiology Reviews 2011, 24, No. 2: 411–445.
  3. Bonifaz A, Macias B, Paredes-Farrera F, Arias P, Ponce RM, Araiza J. Palatal Zygomicosis: experience of 21 cases. Oral Discusion 2008; 14:94-100.
  4. Larone D.H. Medically Important Fungi. A guide to identification 4th Washington DC: ASM Press; 2002. P.163-177.
  5. Bonifaz A; Vázquez-González D; Araiza J, Hernández MA, González F, Chavolla R, Durán MA, Kassack JJ, Rivera C, Ponce RM Mucormycosis in the General Hospital of Mexico. Experience of 158 cases. Hospital General de México OD, México DF. http://www.zygomycota.eu/Meetings/2013.
  6. Brown J. Zygomicosis: an emerging fungal infection. Am J Health Syst Pharm 2005; 1562:2593-2596.
  7. Cruz B A, Pérez PS, Pérez EC y Rovirosa SV. Mucormicosis rinoorbitaria nosocomial causada por Rhizopus oryzae en un lactante desnutrido. Bol Med Hosp Infan Mex 2001; 58 (1), 35-47.
  8. Zamora-de la Cruz D, Díaz-Salazar  XM,  Aguilera JA. Mucormicosis en un paciente con aplasia medular. Reporte de un caso Mucormycosis in a medullar aplasia patient. Case report. Revista Mexicanade Oftalmología 2013;87(3):165-170.
  9. Parimalam K, Zohra BC,  Thirumaran P, and  Manoharan Rhino Cerebral Mucormycosis in Systemic Lupus Erythematosus. Indian J Dermatol 2013; 58(2): 158.
  10. Llorentea A, Perez-Valerob I, García E, Heras I, Fraile V, García P et al. Mortality risk factors in patients with zygomycosis: a retrospective and multicentre study of 25 cases. Enferm Infecc Microbiol Clin 2011;29(4):263–268.
  11. Darrisaw L, Hanson G, Vesole DH and Kehl SC. Cunninghamellainfection post bone marrow transplant: case report and review of the literature 2000;vol 25 No 11, p.1213-1216.
  12. Rajiv CM, Joy S M, Ashbee RH,  Mathews Mycological profile of fungal sinusitis: An audit of specimens over a 7-year period in a tertiary care hospital in Tamil Nadu 2008; 51(4): 493-496.
  13. Garey KW, Pharm.D., Pendland SL, Huynh VT,  Bunch TH,  Jensen GM, et al. CunningTEhamella bertholletiae Infection in a Bone Marrow Transplant Patient: Amphotericin Lung Penetration, MIC Determinations, and Review of the Literature Pharmacotherapy 2001;(7):72-78.
  14. Roden MM, Zaoutis TE, Buchanan WL, Knudsen TA, Sarkisovan TA,  Schaufele RL y al. Epidemiology and Outcome of Zygomycosis: A Review of 929 Reported Cases.Clinical Infectous Diseasse 2005; 41(5):634-653.
  15. Ng, Colin K. Campbell, M. Rothera,. J. B. Houghton, D. Hughes. Successful Treatmentof Sinusitis Caused by Cunninghamella  Clin Infect Dis. 1994; 19(2): 313-316.
  16. Pastor FJ, Ruíz-Cendoya M, Pujol I, Mayayo E, Sutton DA and Guarro J. In Vitro and In Vivo Antifungal Susceptibilities of the Mucoralean Fungus Antimicrobial Agents And Chemotherapy 2010;  54(11): 4550–4555
  17. Ribes JA, Vanover-Sams CL, and Baker Zygomycetes in Human Disease. Clinical Microbiology Reviews 2000; 13(2): 236-301.
  18. Calabria O B, Acosta A. N, Gallegos L y Vargas M H. Mucormicosis cutánea en un recién nacido pretérmino: A propósito de un caso.. Kasmera Maracaibo 2005; 2(33) 20-26.

19.  Pimentel JD, Dreyer G and Lum G D. Peritonitis due to Cunninghamella bertholletiae in a patient undergoing continuous ambulatory peritoneal dialysis. Journal of Medical Microbiology 2006; 1(55), 115–118.